Управление шаговым двигателем | Электроника для всех
Рано или поздно, при постройке робота, возникнет нужда в точных перемещениях, например, когда захочется сделать манипулятор. Вариантов тут два — сервопривод, с обратными связями по току, напряжению и координате, либо шаговый привод. Сервопривод экономичней, мощней, но при этом имеет весьма нетривиальную систему управления и под силу далеко не всем, а вот шаговый двигатель это уже ближе к реальности.Шаговый двигатель это, как понятно из его названия, двигатель который вращается дискретными перемещениями. Достигается это за счет хитрой формы ротора и двух (реже четырех) обмоток. В результате чего, путем чередования направления напряжения в обмотках можно добиться того, что ротор будет по очереди занимать фиксированные значения.
В среднем, у шагового двигателя на один оборот вала, приходится около ста шагов. Но это сильно зависит от модели двигателя, а также от его конструкции.
Один из недостатков шаговиков, по крайней мере для меня, это довольно большой ток. Так как на обмотки напруга подается все время, а такого явления как противоЭДС в нем, в отличии от коллекторных двигателей, не наблюдается, то, по сути дела, мы нагружаемся на активное сопротивление обмоток, а оно невелико. Так что будь готов к тому, что придется городить мощный драйвер на MOSFET транзисторах или затариваться спец микросхемами.
Типы шаговых двигателей
Если не углубляться во внутреннюю конструкцию, число шагов и прочие тонкости, то с пользовательской точки зрения существует три типа:
- Биполярный — имеет четыре выхода, содержит в себе две обмотки.

- Униполярный — имеет шесть выходов. Содержит в себе две обмотки, но каждая обмотка имеет отвод из середины.
- Четырехобмоточный — имеет четыре независимые обмотки. По сути дела представляет собой тот же униполярник, только обмотки его разделены. Вживую не встречал, только в книжках.
Где взять шаговый двигатель.
Вообще шаговики встречаются много где.
Самое хлебное место — пятидюймовые дисководы и старые матричные принтеры. Еще ими можно поживиться в древних винчестерах на 40Мб, если, конечно, рука поднимется покалечить такой антиквариат.
А вот в трехдюймовых флопарях нас ждет облом — дело в том, что там шаговик весьма ущербной конструкции — у него только один задний подшипник, а передним концом вал упирается в подшипник закрепленный на раме дисковода. Так что юзать его можно только в родном креплении. Либо городить высокоточную крепежную конструкцию. Впрочем, тебе может повезет и ты найдешь нетипичный флопарь с полноценным движком.
Схема управления шаговым двигателем
Я разжился контроллерами шаговиков L297 и мощным сдвоенным мостом L298N.
Лирическое отступление, при желании можно его пропустить
Именно на нем был сделан мой первый силовой блок робота. Кроме него там еще два источника питания на 5 и на 3.3 вольта, а также контроллер двух движков на L293 (такой же как и во второй реализации силового блока).
В качестве контроллера тогда был выбран АТ89С2051. Это антикварный контроллер архитектуры MSC-51 в котором из периферии только два таймера, порты да UART, но я его люблю нежно и трепетно, так как первая любовь не проходит никогда =). К сожалению исходники его мега прошивки канули в Лету вместе с убившимся винтом, так что я не могу поделиться теми извращенскими алгоритмами, которые были туда засунуты. А там был и двухканальный ШИМ, и I2C Slave протокол, и контроль за положением шаговика с точным учетом его перемещения. Короче, знатный был проект. Ныне валяется трупом, т.к. все лень запустить Keil uVision и написать новую прошивку. Да и ассемблер С51 я стал уже забывать.
Схема включения L298N+L297 до смешного проста — надо тупо соединить их вместе. Они настолько созданы друг для друга, что в даташите на L298N идет прямой отсыл к L297, а в доке на L297 на L298N.
Осталось только подключить микроконтроллер.

- На вход CW/CCW подаем направление вращения — 0 в одну сторону, 1 — в другую.
- на вход CLOCK — импульсы. Один импульс — один шаг.
- вход HALF/FULL задает режим работы — полный шаг/полушаг
- RESET сбрасывает драйвер в дефолтное состояние ABCD=0101.
- CONTROL определяет каким образом задается ШИМ, если он в нуле, то ШИМ образуется посредством выходов разрешения INh2 и INh3, а если 1 то через выходы на драйвер ABCD. Это может пригодится, если вместо L298 у которой есть куда подключать входы разрешения INh2/INh3 будет либо самодельный мост на транзисторах, либо какая-либо другая микросхема.
- На вход Vref надо подать напряжение с потенциометра, которое будет определять максимальную перегрузочную способность. Подашь 5 вольт — будер работать на пределе, а в случае перегрузки сгорит L298, подашь меньше — при предельном токе просто заглохнет.

Я вначале тупо загнал туда питание, но потом передумал и поставил подстроечный резистор — защита все же полезная вещь, плохо будет если драйвер L298 сгорит.
Если же на защиту пофигу, то можешь заодно и резисторы, висящие на выходе sense выкинуть нафиг. Это токовые шунты, с них L297 узнает какой ток течет через драйвер L298 и решает сдохнет он и пора отрубать или еще протянет. Там нужны резисторы помощней, учитывая что ток через драйвер может достигать 4А, то при рекомендуемом сопротивлении в 0.5 Ом, будет падение напряжения порядка 2 вольт, а значит выделяемая моща будет около 4*2=8 Вт — для резистора огого! Я поставил двухваттные, но у меня и шаговик был мелкий, не способный схавать 4 ампера.
Если же их покупать, то на L6208 получается даже чуть дешевле.Документация по микросхемам:
Kottada | www.visitportugal.com
Kottada
Рестораны и кафе
Контакты
ru
Мнение пользователей
Для того, чтобы оставить комментарий, необходимо пройти логин.
Вместимость
: 70
Номера для некурящих
Место для курения
Автостоянка
Бронирование:
Необходимо
Рекомендуемая цена
: $$$ (20€ — 30€)
Принимаются кредитные карты
Как добраться
Тип транспорта На автомобиле или мотоциклеПешком
Пункт отправления
.
..AbrantesÁguedaAguiar da BeiraAlandroalAlbergaria-a-VelhaAlbufeiraAlcácer do SalAlcanenaAlcobaçaAlcocheteAlcoutimAlenquerAlfândega da FéAlijóAljezurAljustrelAlmadaAlmancilAlmeidaAlmeirimAlmodôvarAlpiarçaAlteAlter do ChãoAlvaiázereAlvitoAmadoraAmaranteAmaresAnadiaAngra do HeroísmoAnsiãoArcos de ValdevezArganilArmação de PêraArmamarAroucaArraiolosArronchesArruda dos VinhosAveiroAvisAzambujaBaiãoBarcelosBarrancosBarreiroBatalhaBejaBelmonteBenaventeBombarralBorbaBoticasBragaBragançaBuçacoCabeceiras de BastoCadavalCaldas da RainhaCaminhaCampo MaiorCantanhedeCarrazeda de AnsiãesCarregal do SalCartaxoCascaisCastanheira de PêraCastelo BrancoCastelo de PaivaCastelo de VideCastelo MendoCastelo NovoCastelo RodrigoCastro DaireCastro MarimCastro VerdeCelorico da BeiraCelorico de BastoChamuscaChavesCinfãesCoimbraCondeixa-a-NovaConímbrigaConstânciaCorucheCosta de CaparicaCovilhãCratoCubaCuriaElvasEntroncamentoEriceiraEspinhoEsposendeEstarrejaEstorilEstremozÉvoraFafeFaroFátimaFelgueirasFerreira do AlentejoFerreira do ZêzereFigueira da FozFigueira de Castelo RodrigoFigueiró dos VinhosFornos de AlgodresFreixo de Espada à CintaFronteiraFunchalFundãoGaviãoGóisGolegãGondomarGouveiaGrândolaGuardaGuimarãesHortaIdanha-a-NovaIdanha-a-VelhaIlha da GraciosaIlha da MadeiraIlha das FloresIlha de Porto SantoIlha de Santa MariaIlha de São JorgeIlha de São MiguelIlha do CorvoIlha do FaialIlha do PicoIlha TerceiraÍlhavoLagoaLagosLamegoLeiriaLinhares da BeiraLisboaLouléLouresLourinhãLousãLousadaLusoMaçãoMacedo de CavaleirosMafraMaiaMangualdeManteigasMarco de CanavesesMarialvaMarinha GrandeMarvãoMatosinhosMealhadaMedaMelgaçoMelidesMértolaMesão FrioMiraMiranda do CorvoMiranda do DouroMirandelaMogadouroMoimenta da BeiraMoitaMoledo do MinhoMonçãoMonchiqueMondim de BastoMonforteMonfortinhoMonsantoMonsarazMontalegreMonte GordoMonte RealMontemor-o-NovoMontemor-o-VelhoMontijoMoraMortáguaMouraMourãoMurçaMurtosaNazaréNelasNisaÓbidosOdemiraOdivelasOeirasOleirosOlhãoOliveira de AzeméisOliveira de FradesOliveira do BairroOliveira do HospitalOurémOuriqueOvarPaços de FerreiraPalmelaPampilhosa da SerraParedesParedes de CouraPedrogão GrandePenacovaPenafielPenalva do CasteloPenamacorPenedonoPenelaPenichePeso da RéguaPinhãoPinhelPiódãoPombalPonta DelgadaPonte da BarcaPonte de LimaPonte de SorPortalegrePortelPortimãoPortoPorto CovoPorto de MósPóvoa de LanhosoPóvoa de VarzimProença-a-NovaQuarteiraRedondoReguengos de MonsarazResendeRibeira de PenaRio MaiorSabrosaSabugalSagresSalvaterra de MagosSanta Comba DãoSanta Maria da FeiraSanta Marta de PenaguiãoSantarémSantiago do CacémSanto TirsoSão Brás de AlportelSão João da MadeiraSão João da PesqueiraSão Martinho do PortoSão Pedro do SulSardoalSátãoSeiaSeixalSernancelheSerpaSertãSesimbraSetúbalSever do VougaSilvesSinesSintraSobral de Monte AgraçoSortelhaSoureSouselTábuaTabuaçoTaroucaTaviraTerras de BouroTomarTondelaTorre de MoncorvoTorres NovasTorres VedrasTrancosoTrofaTróiaVagosVale de CambraValençaValongoValpaçosVendas NovasViana do AlentejoViana do CasteloVidagoVidigueiraVieira do MinhoVila de ReiVila do BispoVila do CondeVila FlorVila Franca de XiraVila Nova da BarquinhaVila Nova de CerveiraVila Nova de FamalicãoVila Nova de Foz CôaVila Nova de GaiaVila Nova de MilfontesVila Nova de PaivaVila Nova de PoiaresVila Pouca de AguiarVila Praia de ÂncoraVila RealVila Real de Santo AntónioVila Velha de RódãoVila VerdeVila ViçosaVilamouraVimiosoVinhaisViseuVizelaVouzelaZambujeira do Mar
É necessário seleccionar um ponto de partida.
Интерфейсные модули Siemens SIMATIC S7-400 IM460, IM461, IM463 построения, организации связи
6ES7460-0AA01-0AB0
SIMATIC S7-400, IM 460-0, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПЕРЕДАТЧИК, ДЛЯ СИСТЕМ ЛОКАЛЬНОГО ВВОДА-ВЫВОДА, БЕЗ ЦЕПЕЙ ПИТАНИЯ, С K-ШИНОЙ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74600AA010AB0
6ES7460-1BA01-0AB0
SIMATIC S7-400, IM 460-1, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПЕРЕДАТЧИК, ДЛЯ СИСТЕМ ЛОКАЛЬНОГО ВВОДА-ВЫВОДА, С ЦЕПЯМИ ПИТАНИЯ, БЕЗ K-ШИНЫ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74601BA010AB0
6ES7460-3AA01-0AB0
SIMATIC S7-400, IM 460-3, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПЕРЕДАТЧИК, ДЛЯ СИСТЕМ РАСПРЕДЕЛЕННОГО ВВОДА-ВЫВОДА, ДЛИНА ЛИНИИ СВЯЗИ ДО 102M, С K-ШИНОЙ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74603AA010AB0
6ES7461-0AA00-7AA0
SIMATIC S7-400, ТЕРМИНАЛЬНЫЙ РЕЗИСТОР ДЛЯ ИНТЕРФЕЙСНОГО МОДУЛЯ IM 461-0
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74610AA007AA0
6ES7461-0AA01-0AA0
SIMATIC S7-400, IM 461-0, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПРИЕМНИК, ДЛЯ СИСТЕМ ЛОКАЛЬНОГО ВВОДА-ВЫВОДА, БЕЗ ЦЕПЕЙ ПИТАНИЯ, С K-ШИНОЙ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74610AA010AA0
6ES7461-1BA01-0AA0
SIMATIC S7-400, IM 461-1, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПРИЕМНИК, ДЛЯ СИСТЕМ ЛОКАЛЬНОГО ВВОДА-ВЫВОДА, С ЦЕПЯМИ ПИТАНИЯ, БЕЗ K-ШИНЫ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74611BA010AA0
6ES7461-3AA00-7AA0
SIMATIC S7-400, ТЕРМИНАЛЬНЫЙ РЕЗИСТОР ДЛЯ ИНТЕРФЕЙСНОГО МОДУЛЯ IM 461-3
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74613AA007AA0
6ES7461-3AA01-0AA0
SIMATIC S7-400, IM 461-3, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПРИЕМНИК, ДЛЯ СИСТЕМ РАСПРЕДЕЛЕННОГО ВВОДА-ВЫВОДА, ДЛИНА ЛИНИИ СВЯЗИ ДО 102M, С K-ШИНОЙ
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74613AA010AA0
6ES7463-2AA00-0AA0
SIMATIC S7-400, IM 463-2, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ МОДУЛЬ, ПЕРЕДАТЧИК, ДЛЯ СИСТЕМ РАСПРЕДЕЛЕННОГО ВВОДА-ВЫВОДА СО СТОЙКАМИ РАСШИРЕНИЯ SIMATIC S5 С ИНТЕРФЕЙСНЫМИ МОДУЛЯМИ IM 314, ДЛИНА ЛИНИИ СВЯЗИ ДО 600M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74632AA000AA0
6ES7468-1AH50-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 0.
75M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681AH500AA0
6ES7468-1BB50-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 1.5M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681BB500AA0
6ES7468-1BF00-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 5M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681BF000AA0
6ES7468-1CB00-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 10M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681CB000AA0
6ES7468-1CC50-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 25M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681CC500AA0
6ES7468-1CF00-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 50M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681CF000AA0
6ES7468-1DB00-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С K-ШИНОЙ, ДЛИНА 100M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74681DB000AA0
6ES7468-3AH50-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С ЦЕПЯМИ ПИТАНИЯ, БЕЗ K-ШИНЫ, ДЛИНА 0.
75M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74683AH500AA0
6ES7468-3BB50-0AA0
SIMATIC S7-400, ИНТЕРФЕЙСНЫЙ КАБЕЛЬ С ЦЕПЯМИ ПИТАНИЯ, БЕЗ K-ШИНЫ, ДЛИНА 1.5M
Альтернативный код заказа (артикул) — 6ES74683BB500AA0
Gillison. Circumboreal gradients in plant species and functional types
Research paperBotanica Pacifica. A journal of plant science and conservation 2012. 1(1):97-107.
Article first published online: 10 SEN 2012 | DOI: 10.17581/bp.2012.01105
Circumboreal Gradients in Plant Species and Functional Types
Andrew N. Gillison
Center for Biodiversity Management, P.O. Box 120, Yungaburra, Queensland, 4884 Australia
Questions: 1) Do patterns of richness and composition of vascular plant species
and plant functional types (PFTs) vary consistently along environmental gradients
in high northern latitudes? 2) What factors influence their distribution? 3) Are there
implications for mapping and managing vegetation?
Location: Circumglobal 40º to 70ºN.
Methods: A standard sampling protocol was used to record vegetation in 111 (40×5 m)
transects focusing on the circumboreal zone but within a broader environmental context
including Arctic Fjaeldmark and tundra, upland continental and maritime meadows,
coastal dunes, desert steppe, boreal shrubland and notthern temperate broadleaf-
conifer forest. Variables included vascular plant species and PFTs (functional
modi), vegetation structure, plant functional complexity (PFC) Shannon and Simpson’s
(functional) diversity indices and site physical features including key climate elements.
Multidimensional scaling (MDS) and standard regression analysis were used to explore
regional vegetation gradients.
Results: Highest counts of species, PFTs, PFC, and functional diversity indices were
recorded in the Russian Far East. Most intensive clustering was revealed through MDS
of species composition whereas analyses of species-weighted PFTs revealed broader
overlapping gradients linking Fennoscandia and western Europe with north America.
Central Mongolian sites were clearly separate from those in the Russian Far East that
overlapped with central Europe and the high Caucasus. PFT-based data showed more
significant linkages with vegetation structure and climate variables than species or individual
traits.
Conclusions: Species and PFT-based data provide complementary support for the
existence of identifiable vegetation gradients within the circumboreal zone. Apart
from floristic evolutionary factors, vegetation response to disturbance and substrate
appears to be secondary to climate as the primary environmental determinant. Unified
systematic sampling and readily transferable technology are needed to better understand
the complex factors influencing vegetation patterns in these high latitudes.
Гиллисон Э.Н. Циркумбореальные градиенты видов растений и функциональных типов. Вопросы: 1) Закономерны ли изменения спектров видового состава и функциональных типов сосудистых растений вдоль
экологических градиентов в высоких северных широтах? 2) Какие факторы влияют на их распределение? 3) Возможно ли
применение данных закономерностей для отображения растительного покрова?
Географическая привязка: В пределах широт от 40º до 70º N.
Методы: стандартные геоботанические описания растительности на 111 (40×5 м) трансектах в циркумбореальной
зоне. В
качестве
переменных использованы виды сосудистых растений и функциональные типы растений (ФТР), структура растительности,
индексы сложности структуры растительного покрова, индексы разнообразия Шеннона и Симпсона, физические
характеристики местообитаний, включая ключевые параметры климата. Многомерное шкалирование (MDS) и стандартный
регрессионный анализ были использованы для изучения региональных градиентов растительности.
Результаты: Наибольшие показатели видового богатства, ФТР и разнообразия функциональных параметров было
отмечено
на российском Дальнем Востоке. Кластеризация по видовому богатству получена по методу многомерного
шкалирования. Анализ спектров
ФТР показал сильные связи Фенноскандии и Западной Европы с Северной Америкой.
Районы Центральной Монголии отличаются от российского Дальнего Востока, спектр ФТР которого оказался
сходным с таковым центральной Европы и высокогорного Кавказа.
ФТР проявляют более тесные связи со структурой
растительности и климатическими переменными, чем видой состав и видовое богатство.
Выводы: Виды и ФТР представляют дополнительный инструмент для идентификации градиентов
растительности в циркумбореальный
зоне. Помимо флористических и эволюционных факторов, климат является основным детерминантом
распределения
растительного покрова, а реакция растительности на субстрат или экзогенные факторы
выходит на второй
план. Методика систематического отбора проб и несложная техника сбора данных позволяет лучше понять факторы, оказывающие
влияние на закономерности распределения растительности в высоких широтах. (Переведено редколлегией).
Keywords: circumboreal gradients, plant functional types, uniform sampling protocol, циркумбореальные градиенты, функциональный тип растений, универсальный протокол сбора данных
FULL TEXT PDF SUPPLEMENTARY MATERIALS
References
Ahti T, Hamet-Ahti L & Jalas J 1968. Vegetation zones and their sections in northwestern Europe. Annales Botanici Fennici 5:169-211.
Baldocchi D, Kelliher FM, Black TA & Jarvis P 2000. Climate and vegetation controls on boreal zone energy exchange. Global Change Biology 6(S1):69-83. CrossRef
Belbin L 1991. Semi-strong Hybrid Scaling, a new ordination algorithm. Journal of Vegetation Science 2(4):491-496. CrossRef
Belbin L 2008. PATN. http://www.patn.com.au. Accessed 30 April 2012.
Bohn U, Gollub G, Hettwer C, Neuhauslova Z, Schlueter H & Weber H 2003. Karte der naturlichen Vegetation Europas. Map of the natural vegetation of Europe. Federal Agency for Nature Conservation, Bonn.
Box EO 1981. Macroclimate and plant forms: An introduction to predictive modeling in phytogeography. Tasks for Vegetation Science -1. Dr. W. Junk, The Hague, 258 pp. CrossRef
Box EO 1996. Plant functional types and climate at the global scale. Journal of Vegetation Science 7(3):309-320. CrossRef
Bradley SW, Rowe JS & Tarnocai C 1982.
An ecological land survey of the Lockhart River map area, Northwest Territories. In: Ecological Land Classification. Series 16. Lands Directorate, Environment Canada, Ottawa, Ontario, 150 pp.
Brandt JP 2009. The extent of the North American boreal zone. Environmental Review 17(1):101-161. CrossRef
Brooks JR, Flanagan LB, Buchmann N & Ehleringer JR 1997. Carbon isotope composition of boreal plants: functional grouping of life forms. Oecologia 110(3):301-311. CrossRef
Bugmann H 1996. Functional types of trees in temperate and boreal forests: classification and testing. Journal of Vegetation Science 7(3):359-370. CrossRef
Chapin FS III 2003. Effects of plant traits on ecosystem and regional processes: a conceptual framework for predicting the consequences of global change. Annals of Botany 91:455-463. CrossRef
Chapin FS III, Bret-Harte MS, Hobbie SE & Zhong H 1996. Plant functional types as predictors of transient responses of Arctic vegetation to global change.
Journal of Vegetation Science 7(3):347-358. CrossRef
Chapin FS III 1993. Functional role of growth forms in ecosystem and global processes. In: Scaling physiological processes. Leaf to globe (J. R. Ehleringer & C. B. Field, eds.), pp. 287-312, Academic Press, London. CrossRef
Craine JM, Froehle DG, Tilman DA, Wedin FS & Chapin FS III 2001. The relationships among root and leaf traits of 76 grassland species and relative abundance along fertility and disturbance gradients. Oikos 93(2):274-285. CrossRef
Diaz S & Cabido M 1997. Plant functional types and ecosystem function in relation to global change. Journal of Vegetation Science 8(4):463-474. CrossRef
Douma JC, de Haan MWA, Aerts R, Witte JPM & van Bodegom PM 2012. Succession-induced trait shifts across a wide range of NW European ecosystems are driven by light and modulated by initial abiotic conditions. Journal of Ecology 100(2):366-380. CrossRef
Ermakov N & Morozova O 2011. Syntaxonomical survey of boreal oligotrophic pine forests in northern Europe and Western Siberia. Applied Vegetation Science 14(4):524-536. CrossRef
Eviner VT & Chapin FS III 2003. Functional matrix: a conceptual framework for predicting multiple plant effects on ecosystem processes. Annual Reviews of Ecology and Systematics 34:455-485. CrossRef
Gillison AN & Carpenter G 1997. A generic plant functional attribute set and grammar for dynamic vegetation description and analysis. Functional Ecology 11(6):775-783. CrossRef
Gillison AN & Liswanti N 2004. Assessing biodiversity at landscape level: the importance of environmental context. Agriculture, Ecosystems and Environment 104:75-86. CrossRef
Gillison AN 2002. A generic, computer-assisted method for rapid vegetation classification and survey: tropical and temperate case studies. Conservation Ecology 6(3) [online] http://www.consecol.org/vol6/iss2/art3
Gillison AN 2012. Plant functional types and traits at the community, ecosystem and world level. In: Vegetation Ecology (E. van der Maarel & J. Franklin, eds.), chapter 12, Wiley-Blackwell, Oxford, UK (in press).
Gillison AN, Jones DT, Susilo FX & Bignell DE 2003. Vegetation indicates diversity of soil macroinvertebrates: a case study with termites along a land-use intensification gradient in lowland Sumatra. Organisms, Diversity & Evolution 3(2): 111-126. CrossRef
Hamet-Ahti L 1979. The dangers of using the timberline as the «zero» line in comparative studies on altitudinal vegetation zones. Phytocoenologia 6:49-54.
Hamet-Ahti L 1981. The boreal zone and its biotic subdivision. Fennia 159(1):69-75.
Harrison SP & Prentice IC 2003. Climate and CO2 controls on global vegetation distribution at the last glacial maximum: analysis based on palaeovegetation data, biome modelling and palaeoclimate simulations. Global Change Biology 9(7):983-1004. CrossRef
Hickler T, Smith B, Sykes MT, Davis MB, Sugita S & Walker K 2004. Using a general vegetation model to simulate vegetation dynamics in northeastern U.
S.A. Ecology 85(2):519-530. CrossRef
Jackson RB, Canadell J, Ehleringer JR, Mooney HA, Sala OE & Schulze ED 1996. A global analysis of root distribution for terrestrial biomes. Oecologia 108(3):389-411. CrossRef
Kaplan JO, Bigelow NH, Prentice IC, Harrison SP, Bartlein PJ, Christensen TR, Cramer W, Matveyeva NV, McGuire AD, Murray DF, Razzhivin VY, Smith B, Walker DA, Anderson PM, Andreev AA, Brubaker LB, Edwards ME & Lozhkin AV 2003. Climate change and Arctic ecosystems: 2. Modeling, paleodata-model comparisons, and future projections. Journal of Geophysical Research 108:D19, 8171. CrossRef
Krestov PV & Nakamura Y 2007. Climatic controls of forest vegetation distribution in Northeast Asia. Berichte der Reinhold-Tuxen-Gesellschaft 19:131-145.
Krestov PV 2003. Forest Vegetation of Easternmost Russia (Russian Far East). In: Forest vegetation of Northeast Asia (J. Kolbek et al., eds.), pp. 93-180, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. CrossRef
Krestov PV, Song JS, Nakamura Y & Verkholat VP 2006.
A phytosociological survey of the deciduous temperate forests of mainland Northeast Asia. Phytocoenologia 36(1):77-150. CrossRef
Krestov PV 2011. Climatic control of eastern Russia in the Holocene. In: Northeast Asia Eco-Forum on Sustainable Development and Regional Ecological Security (Abstracts), Shenyang, China. http://www.iae.cas.cn/qt/tzgg/201109/W020110920572492470881.doc
Lavorel S, Grigulis K, Lamarque P, Colace MP, Garden D, Girel J, Pellet G & Douzet R 2011. Using plant functional traits to understand the landscape distribution of multiple ecosystem services. Journal of Ecology 99(1):135-147. CrossRef
Lavrenko EM & Sochova VB (eds.) 1954. Geobotanical map of the USSR (scale 1:4 million). Komarov Botanical Institute, Leningrad (in Russian).
Lewandowski AS, Noss RF & Parsons DR 2010. The effectiveness of surrogate taxa for the representation of biodiversity. Conservation Biology 24(5):1367-1377. CrossRef
Liira J, Schmidt T, Aavik T, Arens P, Augenstein I, Bailey D, Billeter R et al.
2008. Plant functional group composition and large-scale species richness in European agricultural landscapes. Journal of Vegetation Science 19(1):3-14. CrossRef
Nakamura Y, Krestov PV & Omelko AM 2007. Bioclimate and zonal vegetation in Northeast Asia: first approximation to an integrated study. Phytocoenologia 37(2-3):443-470. CrossRef
Oleson KW, Lawrence DM, Bonan GB, Flanner MG, Kluzek E, Lawrence PJ, Levis S et al. 2010. Technical Description of version 4.0 of the Community Land Model (CLM). Climate and Global Dynamics Division National Center For Atmospheric Research. Technical Note NCAR/TN-478+STR.
Olson DM & Dinerstein E 1998. The Global 200: a representation approach to conserving the Earth’s most biologically valuable ecoregions. Conservation Biology 12(3):502-515. CrossRef
Olson DM, Dinerstein E, Wikramanayake ED, Burgess ND, Powell GVN, Underwood EC, D’Amico JA et al. 2001. Terrestrial Ecoregions of the World: A New Map of Life on Earth. BioScience 51(11):933-938.
CrossRef
Peppe DJ, Royer DL, Cariglino B, Oliver SY, Newman S, Leight E, Enikolopov G et al. 2011. Sensitivity of leaf size and shape to climate: global patterns and paleoclimatic applications. New Phytologist 190(3):724-739. CrossRef
Posada JM, Lechowicz MJ & Kitajima K 2009. Optimal photosynthetic use of light by tropical tree crowns achieved by adjustment of individual leaf angles and nitrogen content. Annals of Botany 103(5):795-805. CrossRef
Qian H, Krestov PV, Fu PY, Wang QL, Song JS & Chourmouzis C 2003. Phytogeography of Northeast Asia. In: Forest vegetation of Northeast Asia (J. Kolbek et al., eds.), pp. 51-91, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. CrossRef
Qian H, Song JS, Krestov PV, Guo Q, Wu Z, Shen X & Guo X 2003. Large-scale phytogeographical patterns in East Asia in relation to latitudinal and climatic gradients. Journal of Biogeography 30(1):129-141. CrossRef
Red Book of Russian Federation (Plants and Fungi). 2008. Tovarishchestvo nauchnikh izdatelstv KMK, Moscow, 855 pp.
(in Russian)
Rivas-Martinez S, Sanchez-Mata D & Costa M 1999. North American boreal and western temperate forest vegetation. (Syntaxonomical synopsis of the potential natural plant communities of North America,II.) Itinera Geobotanica 12:5-316.
Simons H 2005. Global ecological zoning for the FAO Global Forest Resources Assessment 2000. Application and analysis of the map of the Natural Vegetation of Europe. In: Application and Analysis of the Map of the Natural Vegetation of Europe (U. Bohn, C. Hettwer & G. Gollub, eds.), pp. 55-69, Bonn (Bundesamt fur Naturschutz), BfN-Skripten.
Sitch S, Smith B, Prentice IC, Arneth A, Bondeau A, Cramer W, Kaplan JO et al. 2003. Evaluation of ecosystem dynamics, plant geography and terrestrial carbon cycling in the LPJ Dynamic Global Vegetation Model. Global Change Biology 9(2):161-185. CrossRef
Sjors H 1963. Amphi-Atlantic zonation, Nemoral to Arctic. In: North Atlantic Biota and Their History (?. Love & D. Love, eds.
), pp. 109-125, Pergamon Press, New York.
Smith TM, Shugart HH, Woodward FI & Burton PJ 1992. Plant functional types. In: Vegetation Dynamics and Global Change (A. M. Solomon & H. H. Shugart, eds.), pp. 272-292, Chapman & Hall, New York, NY.
Srutek M, Kolbek J, Jarolimek I & Valachovic M 2003. Vegetation-environment relationships within and among selected natural forests in North Korea. In: Forest Vegetation of Northeast Asia (J. Kolbek et al., eds.), pp. 363-382, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. CrossRef
Talbot SS & Meades WJ 2011. Circumboreal Vegetation Map (CBVM) -Mapping the green halo. Concept paper CAFF Strategy Series Report No. 3. http://www.iavs.org/uploads/CBVMConceptPaper.pdf
Thessler S, Ruokolainen K, Tuomisto H & Tomppo E 2005. Mapping gradual landscape-scale floristic changes in Amazonian primary rain forests by combining ordination and remote sensing. Global Ecology & Biogeography 14(4):315-325. CrossRef
Vygodskaya NN, Groisman PY, Tchebakova NM, Kurbatova JA, Panfyorov O, Parfenova EI & Sogachev AF 2007.
Ecosystems and climate interactions in the boreal zone of northern Eurasia. Environmental Research Letters 2(4):(045033) (1-7). CrossRef
Walker DA, Elvebakk A, Talbot SS & Daniels FJA 2005. The Second International Workshop on Circumpolar Vegetation Classification and Mapping: a tribute to Boris A. Yurtsev. Phytocoenologia 35(4):715-726. CrossRef
Walker DA, Raynolds MK, Daniels FJA, Einarsson E, Elvebakk A, Gould WA, Katenin AE, Kholod SS, Markon CJ, Melnikov EE, Moskalenko NG, Talbot SS, Yurtsev BA & the CAVM Team. 2005. The Circumpolar Arctic Vegetation Map. Journal of Vegetation Science 16(3):267-282. CrossRef
Wardle D, Barker G, Bonner K & Nicholson K 1998. Can comparative approaches based on plant ecophysiological traits predict the nature of biotic interactions and individual plant species in ecosystems? Journal of Ecology 86(3):405-420. CrossRef
Westoby M 1998. A leaf-height-seed (LHS) plant ecology strategy scheme. Plant and Soil 199(2):213-227.
CrossRef
Wright IJ, Reich PB, Westoby M, Ackerly DD, Baruch Z, Bongers F, Cavender-Bares J et al. 2004. The worldwide leaf economics spectrum. Nature 428 (6985):821-827. CrossRef
Zemmrich A 2010. Plant communities along an elevational gradient under special consideration of grazing in western Mongolia. Phytocoenologia 40(2-3):91-115. CrossRef
| 1 | Артикул | 1224001730 |
| 2 | Маркировка по газу | 2 Ex nA II T6 Gc X |
| 3 | Маркировка по пыли | Ex tc IIIC T80 C Dc X |
| 4 | Маркировка по рудничному газу и угольной пыли | — |
| 5 | Тип ИС | LED |
| 6 | Световой поток | 8400 лм |
| 7 | Мощность светильника | 72 Вт |
| 8 | Энергоэффективность | 117 лм/Вт |
| 9 | Индекс цветопередачи (CRI) | >70 |
| 10 | Коррелированная цветовая температура (в сфере) | 5000 K |
| 11 | Коэффициент мощности (cos φ) | > 0,96 |
| 12 | Переменный/постоянный ток (AC/DC) | Да |
| 13 | Диммирование | — |
| 14 | Напряжение питания | 230 В |
| 15 | Класс защиты от поражения током | I |
| 16 | Климатическое исполнение | УХЛ1 |
| 17 | Температурный режим | от -60 до +55 C |
| 18 | Цвет корпуса | Металлик |
| 19 | Класс пожароопасности | П-ІІа |
| 20 | Коэффициент пульсации | <5% |
| 21 | Степень защиты (IP) | IP66 |
| 22 | Ударопрочность | IK08/7 Дж |
| 23 | Класс энергоэффективности | A+ |
| 24 | Блок аварийного питания | Нет |
| 25 | Угол обзора | D30 |
| 26 | Гарантия | 36 мес.![]() |
Таблица соответствия марок сталей ГрондГрупп (поставка промышленного крепежа)
Внимание! Указаны как прямые, так и ближайшие аналоги!
| Группа материалов | Страна/стандарт | ||||||
| США | Германия/Италия | Великобри- тания | Франция | Япония | Россия | ||
Твердость HB | AISI/SAE | W.Nr. | DIN | BS | AFNOR | JIS | ГОСТ |
Gr. 50 | 1,0050 | St50-20 | 43/35HS | A50 | SS500 | С285 | |
| 1,0070 | St70-2 | E360 | A70 | С375 | |||
A283 Grade A | 1,0035 | S185/Fe 310-0 | HR 15 | A33 | SS330 | Ст0 | |
| A53 Gr A | St35 | S360 | Ст2 | ||||
| A 107 | 1,0036 | USt 37-2 | SS400 | Ст3кп | |||
| A 414 Grade A | 1,0038 | S235J2G3 / Fe 360 D1 | HS 37/23 | S235J2G3 | SS330 | Ст3сп | |
| A 570 Grade 50 | 1,0050 | St 50-2 | SS490 | Ст5сп | |||
| A 572 Grade 65 | 1,0060 | E335/Fe 590-2 | 55 C | E 335 | SM570 | Ст6 | |
| Качественная углеродистая сталь | |||||||
| 1008 | 1,1121 | C10 | 040A10 | AF-34 | SPHE | 08пс | |
| A516-55 | 13Mn6 | 68F62H5 | SB49 | 09Г2С | |||
| C1010 | 1,0301 | C10 | 040A10 | C10RR | S9CK | 10 | |
A201Gr. Afx | 1,0345 | ASt35 | 141-360 | A37AP | SGV410 | 12К | |
| 180-240 | 1015 | 1,1141 | Ck15 | 080M15 | XC12 | S15C | 15 |
| 180-240 | 1015 | 1,0401 | C15 | 080M15 | C 18 | 15 | |
| 150-200 | 1020 | 1,0402 | C22 | 055 M 15 | S20C | 20 | |
| 150-200 | 1025 | 1,1158 | Ck25 | (070 M 26) | 2 C 25 | S25C | 25 |
| 170-230 | 1035 | 1,0501 | C35 | 060A35 | AF 42 C 20 | S35C | 35 |
| 170-220 | 1035 | 1,1183 | Cf35 | 080A35 | XC 38 H 1 TS | 35 | |
| 210-280 | 1035 | 1,1157 | 40Mn4 | 150M36 | 35M5 | 40Г | |
| 190-240 | 1045 | 1,1191 | Ck45 | 080M46 | XC45 | S45C | 45 |
| 190-240 | 1045 | 1,0503 | C45 | 080M46 | C 45 | S45C | 45 |
| 200-250 | 1050 | 1,1213 | Cf53 | 070M55 | XC 48 H 1 TS | S50C | 50 |
| 210-270 | 1055 | 1,0535 | C55 | 070M55 | C 54 | S55C | 55 |
| 210-270 | 1055 | 1,1203 | Ck55 | 070M55 | 2 C 55 | S55C | 55 |
| 230-270 | 1060 | 1,0601 | C60 | 060 A 62 | C 60 | S58C | 60 |
| 230-290 | 1060 | 1,1221 | Ck60 | 060A62 | 2 C 60 | S58C | 60 |
| 300-330 | 1095 | 1,1274 | Ck101 | CS95 | C100RR | ||
| 160-230 | 1140 | 1,0726 | 35S20 | 212M36 | 35MF6 | А30 | |
| 130-230 | 1215 | 1,0736 | 9SMn36 | S300 | |||
| 200-260 | 1330 | 1,1170 | 28Mn6 | 150M28 | 20M5 | SCMn2 | 30Г |
| 200-270 | 1335 | 1,1167 | 36Mn5 | 150 M 36 | 40M5 | SCMn3 | 35Г2 |
| 290-320 | 9255 | 1,0904 | 55Si7 | 250A53 | 55S7 | 55С2 | |
| 120-220 | 11L08 | 1,0722 | 10SPb20 | 10PbF2 | А12 | ||
| 130-220 | 12L13 | 1,0718 | 9SMnPb28 | S250Pb | |||
| 130-230 | 12L14 | 1,0737 | 9SMnPb36 | S300Pb | |||
| Низколегированная углеродистая сталь | |||||||
| 160-220 | 2515 | 1,5680 | 12Ni19 | Z 18 N 5 | Z18N5 | ||
| 210-280 | 3135 | 1,5710 | 36NiCr6 | 640A35 | 35NC6 | SNC236 | 40ХН |
| 250-360 | 3415 | 1,5732 | 14NiCr10 | 14NC11 | SNC815 | 12ХН3А | |
| 200-290 | 4130 | 1,7218 | 25CrMo4 | 708 A 25 | 25CD4 | SCM420 | 20ХМ |
| 230-330 | 4137 | 1,7220 | 34CrMo4 | 708A37 | 35CD4 | SCM435H | АС38ХГМ 35ХМ |
| 230-330 | 4140 | 1,7223 | 41CrMo4 | 708M40 | 42CD4TS | SCM440 | 40ХФА 38ХМА |
| 240-360 | 4140 | 1,7225 | 42CrMo4 | 708M40 | 42CD4 | SCM440H | 40ХН2МА |
| 270-360 | 4340 | 1,6582 | 34CrNiMo6 | 817M40 | 35NCD6 | SNCM447 | 38Х2Н2МА |
| 140-180 | 4520 | 1,5423 | 16Mo5 | ||||
| 210-270 | 5015 | 1,7015 | 15Cr3 | 523M15 | 12C3 | SCr415 | 15Х |
| 200-330 | 5115 | 1,7131 | 16MnCr5 | 527 M 17 | 16 MC 4 | SMnC420 | 18ХГ |
| 210-290 | 5132 | 1,7033 | 34Cr4 | 530A32 | 32C4 | SCr430H | 35Х |
| 210-230 | 5140 | 1,7045 | 42Cr4 | 530 A 40 | 42 C 4 TS | SCr435 | 40Х |
| 240-330 | 5140 | 1,7035 | 41Cr4 | 530M40 | 42C4 | SCr440H | 40Х |
| 320-330 | 5155 | 1,7176 | 55Cr3 | 525 A 58 | 55 Cr 3 | SUP9 | 50ХГА |
| 240-360 | 6150 | 1,8159 | 50CrV4 | 735A51 | 51 CV 4 | SCM445H | 50ХФА |
| 210-330 | 8620 | 1,6523 | 21NiCrMo2 | 805M20 | 20NCD2 | SNCM220 | 20ХГНМ |
| 320-330 | 9262 | 1,7108 | 60SiCr7 | 60SC7 | SUP6 | 60С2 | |
| 240-330 | 9840 | 1,6511 | 36CrNiMo4 | 817 M 37 | 40NCD3 | SCNM439 | 40ХН2МА |
| 150-200 | A350 LF5 | 1,5622 | 14Ni6 | 16N6 | |||
| 200-260 | A353 | 1,5662 | X8Ni9 | 3603-509 LT | 9 Ni 490 | ||
| 270-370 | 3415; 3310 | 1,5752 | 14NiCr14 | 655M13 | 12NC15 | SNC815 | 12Х2Н4А |
| 140-180 | A 182 F22 | 1,7380 | 10CrMo9 10 | 3606-622 | 12CD9;10 | SFVAF22A | 10Х2М |
| 140-180 | A 182- F 11 | 1,7335 | 13CrMo4 4 | 1502 620-540 | 15 CD 3. 5 | SFVAF12 | 12ХМ |
| 140-170 | A204 GrA | 1,5415 | 15Mo3 | 1503-243 | 15D3 | STBA12 | |
| 290-300 | E 71400 | 1,8509 | 41CrAIMo7 | 905M39 | 40CAD6, 12 | ||
| 200-330 | 1,7262 | 15CrMo5 | 12CD4 | ||||
| 150-200 | 1,7715 | 14MoV63 | 1503-660- 460 | ||||
| 300-400 | 1,6587 | 17CrNiMo6 | 18NCD6 | SNCM815 | 18Х2Н4ВА | ||
| 300-430 | 1,7361 | 32CrMo12 | 722M24 | 30CD12 | |||
| Быстрорежущая сталь | |||||||
| 200-230 | 52100 | 1,3505 | 100Cr6 | 535A99 | 100C6 | SUJ2 | ШХ15 |
| 240-330 | A 128 | 1,3401 | X120Mn12 | Z120M12 | |||
| 240-300 | M2 | 1,3343 | S 6-5-2 | BM2 | Z85WDCV 06-05-04-02 | SKH51 | Р6М5 |
| 240-300 | M7 | 1,3348 | S 2-9-2 | Z100DCWV 09-04-02-02 | SKH58 | ||
| 240-320 | T1 | 1,3355 | S 18-0-1 | BT1 | Z80WCV 18-04-01 | SKH | Р18 |
| 250-320 | T4 | 1,3255 | S 18-1-2-5 | BT4 | Z80WKCV 18-05-04-01 | SKh4 | Р18К5Ф2 |
| 250-320 | 1,3243 | S 6-5-2-5 | BM 35 | Z85WDKCV 06-05-05- 04-02 | SKH55 | Р6М5К5 | |
| Высоколегированная и инструментальная сталь | |||||||
| 230-260 | A2 | 1,2363 | X100CrMoV51 | BA2 | Z100CDV5 | SKD12 | 9Х5ВФ |
| 220-240 | A6 | ||||||
| 240-280 | A7 | ||||||
| 260-270 | D2 | 1,2379 | X155CrVMo12-1 | BD2 | Z160CDV12 | SKD11 | Х12МФ |
| 260-270 | D3 | 1,2080 | X210Cr12 | BD3 | X200Cr12 | SKD1 | Х12 |
| 360-500 | h20 | 1,2365 | X 32 CrMoV 3 3 | Bh20 | 32 CDV 12-28 | SKD7 | 3Х3М3Ф |
| 360-470 | h21 | 1,2343 | X38CrMoV5-1 | Bh21 | Z 38 CDV 5 | SKD6 | 4Х5МФС |
| 330-380 | h22 | 1,2606 | X37CrMoW5-1 | Bh22 | Z35CWDV5 | SKD62 | 4Х4ВМФС |
| 360-530 | h23 | 1,2344 | X40CrMoV51 | Bh23 | Z40CDV5 | SKD61 | 4Х5МФ1С |
| 380-500 | h29 | 1,2678 | Bh29 | ||||
| 360-530 | h31 | 1,2581 | X30WCrV9 3 | Bh31 | Z30WCV9 | SKD5 | 3Х2В8Ф |
| 230-260 | L3 | 1,2067 | 102Cr6 | BL3 | Y100C6 | SUJ2 | 9Х2 |
| 240-260 | L6 | 1,2713 | 55NiCrMoV6 | BHH 224/5 | 55NCDV7 | SKT3 | 5ХНМ |
| 240-260 | M3 | 1,3342 | SC6-5-2 | Z90WDCV 06-05-04-02 | 85Х4М5Ф 2В6Л | ||
| 200-210 | O1 | 1,2510 | 100MnCrW4 | BO1 | 90MnWCrV5 | ХВСГФ | |
| 230-240 | O7 | ||||||
| 230-240 | S1 | 1,2542 | 45WCrV7 | BS1 | 45 WCV 20 | 5ХВ2С | |
| 200-220 | S7 | ||||||
| 200-250 | W110 | 1,1545 | C105W1 | SK3 | У10А | ||
| 200-230 | W112 | 1,1563 | C125W | SK1 | У13 | ||
| 230-260 | W210 | 1,2833 | 100V1 | BW2 | Y1105V | ||
| 260-270 | 1,2601 | X165CrMoV12 | SKD11 | Х12МФ | |||
| 260-270 | 1,2436 | X210CrW12 | Z 210 CW 12-01 | Х12ВМ | |||
| 230-260 | 1,2419 | 105WCr6 | 105WC13 | SKS2 | ХВГ | ||
| Ферритные и мартенситные нержавеющие стали | |||||||
| 230-240 | 1,4027 | G-X20Cr14 | 420C29 | Z20C13M | |||
| 210-240 | 1,4034 | X 46 Cr13 | 420S45 | Z 44 C 14 | SUS420J2 | 40Х13 | |
| 260-330 | 1,4086 | GX 120 Cr29 | 452C11 | ||||
| <255 | 1,4568 | X7CrNiAl177 | 301S81 | Z 9 CAN 17-07 | SUS631 | 09Х17Н7Ю | |
| 300-420 | 13-8 PH | 1,4534 | |||||
| 280-400 | 15-5 PH | 1,4540 | X4CrNiCuNb164 | Z6CNU15. 05 | |||
| 280-400 | 15-7 PH | 1,4532 | X7CrNiMoAl157 | Z8CNDA15.07 | |||
| 120-180 | 403 | 1,4000 | X6Cr13 | 403S17 | Z 8 C 12 | SUS410S | 08Х13 |
| <185 | 405 | 1,4002 | X 6 CrAl 13 | 405S17 | Z 8 CA 12 | SUS405 | 10Х13СЮ |
| 140-200 | 410 | 1,4006 | X12Cr13 | 410S21 | Z 10 C 13 | SUS410 | 12Х13 |
| 130-180 | 410 S | 1,4001 | X7Cr14 | 403S17 | Z 8 C 13 FF | SUS403 | 08Х13 |
| 180-240 | 416 | 1,4005 | X12CrS13 | 416S21 | Z 11 CF 13 | ||
| 230-290 | 420 | 1,4021 | X20Cr13 | 420S37 | Z 20 C 13 | SUS420J1 | 20Х13 |
| 140-200 | 430 | 1,4016 | X6Cr17 | 430S17 | Z 8 C 17 | SUS430 | 12Х17 |
| 200-260 | 430F | 1,4104 | X12CrMoS17 | Z10CF17 | |||
| 260-290 | 431 | 1,4057 | X17CrNi16-2 | 431S29 | Z15CNi6. 02 | SUS431 | 20Х17Н2 |
| 140-200 | 434 | 1,4113 | X6CrMo17-1 | 434S17 | |||
| 275-360 | 630 | 1,4542 | X5CrNiCuNb164 | Z7CNU16.04 | |||
| 266 — 325 | 1,4731 | X40CrSiMo10-2 | X40CrSiMo 10-2 | Z40CSD10 | SUh4 | 40Х10С2М | |
| Аустенитные нержавеющие стали | |||||||
| 130-140 | 1,4312 | GX 10 CrNi 18-8 | 302C25 | Z10CN18.9M | |||
| 130 | 1,4552 | GX 5 CrNiNb 19-11 | 347C17 | Z 6 CNNb 18.10 M | |||
| 140-200 | 1,4581 | GX5CrNiMoNb 19-11-2 | 318C17 | Z 4CNDNb 18.12 M | |||
| 120-180 | 1,4865 | G-X40NiCrSi 38 18 | 330C11 | ||||
| 150-170 | ASTM A240 | ||||||
| 240-270 | ASTM A240 | ||||||
| 330-360 | ASTM A693 | ||||||
| 230-290 | CA 6-NM | 1,4313 | X3 CrNiMo 13-4 | 425C11 | Z4CND13. 4M | ||
| 140-200 | CF-8 | 1,4308 | GX5 CrNi 19-10 | 304C15 | Z6CN18.10M | ||
| 140-200 | CF-8M | 1,4408 | GX5 CrNiMo 19-11-2 | 316C16 | |||
| 150-230 | UNS N 08904 | 1,4539 | X 1 NiCrMoCuN 25-20-5 | Z 2 NCDU 25-20 | |||
| 210-290 | 301 | 1,4310 (FSt) | X 10 CrNi 18-8 | 301S21 | Z 11 CN 17-08 | SUS301 | 07Х16Н6 |
| 150-210 | 303 | 1,4305 (А1) | X 8 CrNiS 18-9 | 303S22 | Z 8 CNF 18-09 | SUS303 | 12Х18Н9 |
| 150-210 | 304 | 1,4301 (А2) | X5CrNi18 9 | 304S16 | Z6CN18.09 | SUS304 | 08Х18Н10 |
| 140-210 | 304L | 1,4306 | X2CrNi19 11 | 304S11 | Z 3 CN 19-11 FF | SUS304L | 03Х18Н11 |
| 170-230 | 304LN | 1,4311 | X2CrNiN18 10 | 304S61 | Z 3 CN 18-07 Az | SUS304LN | 03Х18Н11 |
| 150-210 | 305 | 1,4303 (А2) | X 4 CrNi18-12 | 305S17 | Z 5 CN 18-11 FF | SUS305J1 | 06Х18Н11 |
| 150-230 | 309 | 1,4828 | X15CrNiSi20 12 | 309S24 | Z 9 CN 24-13 | SUh409 | 20Х20Н14 С2 |
| 170-240 | 310 | 1,4841 | X15CrNiSi25 20 | 314S25 | Z 15 CNS 25-20 | SUh410 | 20Х25Н20 С2 |
| 150-230 | 310S | 1,4845 | X12CrNi 25 21 | 310S24 | Z12CN25 20 | SUS310S | 10Х23Н18 |
| 160-220 | 316 | 1,4401 (А4) | X5CrNiMo 17 12 2 | 316S13 | Z6CND17. 11 | SUS316 | 08Х16Н11 М3 |
| <215 | 316 | 1,4436 | X 5 CrNiMo 17-13-3 | 316S33 | Z6CND18- 12-03 | SUS316 | 08Х16Н11 М3 |
| <215 | 316L | 1,4404 | X 2 CrNiMo 17-12-2 | 316S11 | Z2CND17.12 | SUS316 | 03Х17Н14 М3 |
| 150-210 | 316L | 1,4435 | X2CrNiMo 18-14-3 | 316S11 | Z 3 CND 17-13-03 | SUS316L | 03Х17Н14 М3 |
| 180-240 | 316LN | 1,4429 | X2CrNiMoN 17 13 3 | 316S63 | Z 3 CND 17-12 Az | SUS316LN | 03Х16Н15 М3 |
| 150-220 | 316Ti | 1,4571 (А5) | X6CrNiMoTi 17 12 2 | 320S18 | Z6NDT17.12 | 316Ti | 08Х17Н 13М2Т |
| 150-210 | 317L | 1,4438 | X 2 CrNiMo 18-15-4 | 317S12 | Z 2 CND 19-15-04 | SUS317L | |
| 150-230 | 318 | 1,4583 | X10CrNiMoNb 18 12 | 09Х16Н 15М3Б | |||
| 150-220 | 321 | 1,4541 (А3) | X6CrNiTi18 10 | 321S31 | Z6CNT18. | SUS321 | 08Х18Н10Т |
| 150-230 | 321 | 1,4878 | X12CrNiTi18 9 | 321S51 | Z 6 CNT 18-10 | SUS321H | 12Х18Н10Т |
| 170-240 | 330 | 1,4864 | X12NiCrSi36 16 | NA 17 | Z 20 NICS 33-16 | SUh430 | |
| 160-230 | 347 | 1,4550 | X6CrNiNb18 10 | 314S20 | Z6CNNb1 8.10 | SUS347 | 08Х18Н 12Б |
| 140-200 | 405 | 1,4724 | X10CrAI13 | 403S17 | Z 13 C 13 | SUS405 | 10Х13СЮ |
| 160-220 | 446 | 1,4762 | X10CrAI 24 | Z 12 CAS 25 | SUh546 | 15Х28 | |
| Аустенитно-ферритные нержавеющие стали | |||||||
| 200-270 | 329 | 1,4460 | X 3 CrNiMoN 27-5-2 | Z 5 CND 27-05 Az | SUS329J1 | 08Х21Н 6М2Т | |
| <290 | S31500 | 1,4417 | GX 2 CrNiMoN 25-7-3 | ||||
| <270 | S31803 | 1,4462 | X 2 CrNiMoN 22-5-3 | 318S13 | Z 3 CND 22-05 Az | ||
| <260 | S32304 | 1,4362 | X 2CrNiN 23-4 | 03Х23Н6 | |||
| 160-230 | 1,4821 | X20CrNiSi254 | X15CrNiSi254 | Z20CNS 25. | |||
| <302 | S32550 | ||||||
| <310 | S32750 | 1,4410 | X 2 CrNiMoN 25-7-4 | Z5CND 20.12M | |||
| <270 | S32760 | ||||||
| Серый чугун | |||||||
| 1175 | No 20 B | 0,6010 | GG 10 | Grade 100 | Ft 10 D | FC100 | СЧ10 |
| 185 | No 25 B | 0,6015 | GG 15 | Grade 150 | Ft 15 D | FC150 | СЧ15 |
| 205 | No 30 B | 0,6020 | GG 20 | Grade 220 | Ft 20 D | FC200 | СЧ20 |
| 220 | No 35 B | 0,6025 | GG 25 | Grade 260 | Ft 25 D | FC250 | СЧ25 |
| 230 | No 45 B | 0,6030 | GG 30 | Grade 300 | R 30 D | FC300 | СЧ30 |
| 235 | No 50 B | 0,6035 | GG 35 | Grade 350 | Ft 35 D | FC350 | СЧ35 |
| 250 | No 55 B | 0,6040 | GG 40 | Grade 400 | Ft 40 D | ||
| Высокопрочный чугун (с шаровидным графитом) | |||||||
| 143-187 | 60-40-18 | 0,7033 | GGG 35. 3 | 350/22 | FGS 350-22 | FCD350-22L | ВЧ40 |
| 156-217 | 65-45-12 | 0,7040 | GGG 40 | 420/12 | FCD400 | ВЧ40 | |
| 187-255 | 80-55-06 | 0,7050 | GGG 50 | 500/7 | FGS 500-7 | FCD500 | ВЧ50 |
| 210-280 | 80-60-03 | 0,7060 | GGG 60 | 600/3 | FGS 600-3 | FCD600 | ВЧ60 |
| 241-302 | 100-70-03 | 0,7070 | GGG 70 | 700/2 | FGS 700-2 | FCD700 | ВЧ70 |
| 265-302 | 120-90-02 | 0,7080 | GGG 80 | 900/2 | FGS 900-2 | FCD800 | ВЧ80 |
| Ковкий чугун | |||||||
| 150 max | 32510 | 0,8135 | GTS-35 | MN 350-10 | FCMB35 | КЧ35 | |
| 149-197 | 40010 | 0,8145 | GTS-45 | MN450-6 | FCMP440 | КЧ45 | |
| 179-229 | 50005 | 0,8155 | GTS-55 | P50-05 | FCMP540 | КЧ55 | |
| 217-269 | 70003 | 0,8165 | GTS-65 | P60-03 | |||
| 269-321 | 90001 | 0,8170 | GTS-70 | P70-02 | Mn 700-2 | ||
| 230 | 0,8035 | GTW-35-04 | W340/3 | MB35-7 | |||
| 220 | 0,8040 | GTW-40-5 | W410/4 | MB40-10 | |||
| 220 | 0,8045 | GTW-45-07 | |||||
| 165 | 0,8055 | GTW-55 | |||||
| 180 | 0,8065 | GTW-65 | |||||
| Безферритные материалы | |||||||
| 20 | 1050 | 3,0255 | Al99,5 | 1B | A5 | 1050 | АД0 |
| 80-160 | 2011 | 3,1655 | AlCu6BiPb | FC1 | A-U5PbBi | ||
| 45-105 | 2017 | 3,1325 | AlCu4MgSi | A-U4G | 2017 | Д1 | |
| 45-135 | 2024 | 3,1355 | AlCu4Mg1 | L97 | A-U4G1 | 2024 | Д16 |
| 28-55 | 5005 | 3,3315 | AlMg1 | N41 | A-G0,6 | 5005 | АМг1 |
| 36-63 | 5050 | 3,3316 | AlMg1,5 | 3L44 | A-G1,5 | ||
| 47-88 | 5052 | 3,3523 | AlMg2,5 | 2L56 | A-G2,5C | ||
| 65-120 | 5056 | 3,3549 | AlMg5Cr | N6 | |||
| 77-93 | 5083 | 3,3547 | ASlMg4,5Mn | N8 | A-G4,5MC | 5083 | АМг4 |
| 70-87 | 5086 | 3,3545 | AlMg4 | A-G4MC | |||
| 62-81 | 5454 | AlMg3Mn | N51 | A-G2,5MC | |||
| 60-95 | 5754 | 3,3535 | AlMg3 | N5 | A-G3M | 5154 | АМг3 |
| 25-105 | 6063 | 3,3206 | AlMg0,5Si | H9 | 6063 | АД31 | |
| 58-95 | 6351 | 3,2315 | AlSiMg0,5Mn | h40 | 6061 | АД35 | |
| 53-105 | 7005 | 1915 | |||||
| 132-147 | 7050 | 3,4345 | AlZn6CuMgZr | L 86 | AZ 4 GU/ 9051 | ||
| 60-150 | 7075 | 3,4365 | AlZn5,5MgCu | DTD5074 | A-Z5GU | 7075 | В95 |
| — | 360 | 3,2383 | R2147AlSi10Mg | LM 9 | AC2B | АК5М2 | |
| — | 413 | 3,2582 | R2147AlSi12 | ADC1 | |||
| Наимено -вание | Высокотемпературные сплавы (на основе железа) | ||||||
| 20CB-3 | ASTM B463 | ||||||
| Aermet 100 | |||||||
| AL 36 | ASTM F1684 | ||||||
| AL 42 | ASTM F30 | ||||||
| AL 4750 | ASTM B753 | ||||||
| AL-6XN Alloy | ASTM SB688 | ||||||
| ALLOY 21-6-9 | ASTM A666 | ||||||
| Allvac 330 | 5592, 5716 | ||||||
| Armco 18 | |||||||
| Armco 20-45-5 | |||||||
| Crusible A286 | ASTM 368 | 1,4980 | HR 5152 | Z06 NCT 25 | |||
| Discaloy 16/25/6 | 5725 | Z3 NCT 25 | |||||
| Discaloy 24 | ASTM A638 | Z3 NCT 25 | |||||
| Greek Ascoloy | 5508 | ||||||
| Haynes 556 | 5768 | X12CrCoNi2120 | |||||
| Incoloy 800 | ASME SB 409 | X10NiCrAlTi3220 | 3082-76 | 25 NC 3520 | |||
| Incoloy 801 | 5552 | G-X50CrNi3030 | |||||
| Incoloy 802 | |||||||
| Incoloy 803 | |||||||
| Incoloy DS | X12NiCrSi3616 | 3072-76 | |||||
| Jethete M-152 | 5718, 5719 | Z12 CND 12 | |||||
| N 155 | 5768 | Z12 CNKDW 20 | |||||
| N 156 | |||||||
| S 590 | 5533 | X40CoCrNi2020 | Z42 CKNDW | ||||
| Sanicro 30 | X2NiCrAlTi3220 | ||||||
| Vasco 13-8 Mo | 5629 | ||||||
| VascoMax C-200 | |||||||
| VascoMax C-250 | 6501, 6512, 6520 | ||||||
| VascoMax C-300 | 6514 | ||||||
| VascoMax C-350 | |||||||
| VascoMax T-200 | |||||||
| VascoMax T-250 | 6518, 6519, 6591 | ||||||
| Наимено вание | Высокотемпературные сплавы (на основе кобальта) | ||||||
| Altemp S 816 | 5534 | CoCr20Ni20W | |||||
| HS 21 | ASTM F-75 | CoCr28Mo | 3531 | ||||
| HS 25 | AISI 670 | CoCr20W15Ni | KC 20 WN | ||||
| HS 30 | CoCr26Ni14Mo | ||||||
| HS 31 | ASTM A567 | CoCr25NiW | 3146 | KC 25 NW | |||
| HS 36 | CoCr19W14NiB | ||||||
| Jetalloy 209 | |||||||
| L 251 | |||||||
| L 605 | 5759 | CoCr20W15Ni | KC 20 WN | ||||
| M 203 | |||||||
| M 204 | |||||||
| M 205 | |||||||
| MAR M-322 | CoCr22W9TaZrNb | ||||||
| MAR M-509 | CoCr24Ni10WtaZrB | 3146-3 | |||||
| MAR M-905 | |||||||
| MAR M-918 | CoCr20Ni20Ta | ||||||
| MAR-M 302 | CoCrW10TaZrB | ||||||
| MP35N | |||||||
| Nickelvac TJA-1537 | ASTM F1537 | ||||||
| Stellite SF1 | KC 33 W13 | ||||||
| Stellite SF12 | KC 28 W8 | ||||||
| StelliteSF 6 V-36 | 5387 | CoCr25Ni20 M0WNb | KC 26 NW | ||||
| WI-52 | CoCr21Mo11W | ||||||
| X 40 | ASTM A567 | CoCr25NiW | 3146-2 | ||||
| X 45 | |||||||
| X 50 | |||||||
| Наимено -вание | Высокотемпературные сплавы (на основе никеля) | ||||||
| AL 22 | ASME SB575 | ||||||
| Allcor | |||||||
| Astroloy | |||||||
| Duranickel 310 | |||||||
| GMR 235 | AISI:686 | ||||||
| GMR 235-D | NiCr16MoAl | ||||||
| Hastelloy B | 5396A | S-NiMo30 | ND27FeV | ||||
| Hastelloy B-2 | |||||||
| Hastelloy C | 5388C | NiCr17Mo17FeW | NC17DWY | ||||
| Hastelloy D | |||||||
| Hastelloy N | |||||||
| Hastelloy R235 | |||||||
| Hastelloy W | |||||||
| Hastelloy X | 5536 | 2,4665 | NiCr22FeMo | HR6,204 | NC22FeD | ||
| Haynes 75 | |||||||
| HS 27 | NiCo32Cr26Mo | KC20WN | |||||
| IN 100 | 5397 | NiCo15Cr10MoAlTi | NK15CAT | ||||
| IN 713 | |||||||
| Incoloy 020 | ASME SB463 | 2,4660 | |||||
| Incoloy 804 | |||||||
| Incoloy 825 | ASME SB424 | 2,4858 | NiCr21Mo | 3072-76 | NC21FeDU | ||
| Incoloy 901 | 5660 | NiFe35Cr14MoTi | Z8NCDT42 | ||||
| Incoloy 903 | |||||||
| Incoloy 925 | |||||||
| Inconel 600 | 5540 | 2,4816 | NiCr15Fe | 3072-76 | NC15Fe | ||
| Inconel 601 | 5715 | 2,4851 | |||||
| Inconel 617 | 2,4663 | ||||||
| Inconel 622 | 2,4602 | ||||||
| Inconel 625 | ASME SB443 | 2,4856 | NiCr22Mo9Nb | NC22FeDNB | |||
| Inconel 620 | 2,4642 | ||||||
| Inconel 700 | NiCo28Cr15MoAlTi | NK27CADT | |||||
| Inconel 702 | 5550 | ||||||
| Inconel 706 | 57-2 | ||||||
| Inconel 713 | 5391 | G-NiCr13Al16MoNb | 3146,3 | NC13AD | |||
| Inconel 718 | 5383 | 2,4668 | NiCr19Fe19NbMo | HR8 | NC19FeNb | ||
| Inconel 718-OP | |||||||
| Inconel 720 | |||||||
| Inconel 721 | |||||||
| Inconel 722 | 5541 | NiCr16FeTi | NC16Feti | ||||
| Inconel 725 | |||||||
| Inconel 751 | 2,4694 | ||||||
| Inconel X-750 | 5542 | 2,4669 | NiCr16FetTi | NC15FeTNb | |||
| Jessop G 81 | NiCr20Co18Ti | ||||||
| Jethete M-252 | 5551 | G-NiCr19Co | |||||
| MAR-M 200 | NiW13Co10Cr9AlTi | NKW10CATaHf | |||||
| MAR-M 246 | NiCo10W10Cr9AlTi | ||||||
| MAR-M 421 | NiCr16Co10WalTi | ||||||
| MAR-M 432 | NiCo20Cr16WAlTi | ||||||
| Monel 400 | 4544 | 2,4360 | NiCu30Fe | 3072-76 | NU30 | ||
| Monel K 500 | 4676 | 2,4375 | NiCu30Al | 3072-76 | |||
| Monel R 405 | 4674 | ||||||
| Nimocast 713 | 5391A | G-NiCr13A16MoNb | HC203 | NC13AD | |||
| Nimocast PD 16 | NiFe33Cr17Mo | ||||||
| Nimocast PE 10 | HC202 | NC20N13 | |||||
| Nimonic 105 | 2,4634 | NiCo20Cr15MoAlTi | HR3 | NCKD20ATV | |||
| Nimonic 115 | 2,4636 | NiCo15Cr15MoAlTi | HR401,601 | NCVK15ATD | |||
| Nimonic 75 | 2,4630 | NiCr20Ti | HR5, 203-4 | NC20T | |||
| Nimonic 80A | 2,4631 | NiCr20TiAl | HR401,601 | NC20TA | |||
| Nimonic 86 | |||||||
| Nimonic 90 | 2,4632 | NiCr20Co18Ti | HR2,202 | NCK20TA | |||
| Nimonic 901 | 5660, 5661 | 2,4662 | NiCr15MoTi | Z8NCDT42 | |||
| Nimonic 95 | |||||||
| Nimonic C-22 | |||||||
| Nimonic C-263 | 2,4650 | NiCr20CoMoTi | HR10 | NCK20D | |||
| Nimonic C-276 | ASME SB575 | 2,4819 | |||||
| Nimonic PE 13 | 5536E | NiCr22Fe18Mo | HR6,204 | NC22FeD | |||
| Nimonic PE 16 | NiFe33Cr17Mo | HR207 | NW11AC | ||||
| Nimonic PK 25 | 5751A | NKCD20ATU | |||||
| Nimonic PK 31 | |||||||
| Nimonic PK 33 | NiCr20Co16MoTi | 5057 | NC19KDU/V | ||||
| R-235 | |||||||
| Refractaloy 26 | AISI:690 | Z6NKCDT38 | |||||
| Rene’ 100 | NiCo15Cr10MoAlTi | ||||||
| Rene’ 125 | |||||||
| Rene’ 41 | 5712, 5713 | NiCr19Co11MoTi | NC19KDT | ||||
| Rene’ 63 | |||||||
| Rene’ 77 | |||||||
| Rene’ 80 | |||||||
| Rene’ 95 | NC14K8 | ||||||
| TRW VIA | NiTa9Co8W6CrAl | ||||||
| Udimet 500 | AISI:684 | NiCr18CoMoAlTi | NCK19DAT | ||||
| Udimet 520 | |||||||
| Udimet 630 | NiCr19NbMo | ||||||
| Udimet 700 | AISI:687 | NiCo15Cr15MoAlTi | NCKD20AT | ||||
| Udimet 710 | NCK18TDA | ||||||
| Udimet 718 | 5583 | NiCr19Fe19NbMo | HR8 | NC19FeNb | |||
| Waspaloy | 5544 | 2,4654 | NiCr20Co14MoTi | NC20K14 | |||
Наимено- вание | Титановые сплавы-α | ||||||
| Ti-5Al-2.5Sn | ASTM: B 265 | TiAl5Sn2 | TA 14,17 | T-A5E | |||
| Ti-7Al-4Mo | ASTM: B 381 | TiAl7Mo4 | |||||
| Ti-8Al-1Mo-1V | 4915, 4933, 4972 | TiAl8Mo1V1 | |||||
| Ti-6Al-4Zr-2Mo-2Sn | 4919, 4975,4976 | TiAl6Zr4Mo2Sn2 | |||||
Наимено | Титановые сплавы-αβ | ||||||
| Ti-6Al-4V | 4906, 4920, 4928, 4965, 4967 | TiAl6V4 | TA 10-13; TA 28 | T-A6V | |||
| Ti-6Al-6V-2Sn | 4971 | TiAl6V6Sn2 | |||||
| Ti-4Al-4 Mo-2Sn-0.5Si | TiAl4Mo4Sn2Si0.5 | 5103 | T-A4DE | ||||
| Ti-4Al-4 Mo-4Sn-0.5Si | TiAl4Mo4Sn4Si0.5 | 5203 | |||||
| Ti-7Al-4Mo | ASTM: B 381 | TiAl7Mo4 | |||||
| Ti-6Al-5Zr-0.5Mo-0.25Si | TiA6Zr5Mo0.5Si0.25 | T-AGZ-50 | |||||
| Ti-6Al-5Zr +4Mo-Cu-0.2Si | TiAl6Zr5Mo4CuSi0.2 | M201 | |||||
| Allvac 3-2.5 | 4943, 4944 | ||||||
| Allvac 6-4ELI | 4907, 4930, 4931 | ||||||
| Allvac 6-2-4-6 | 4981 | ||||||
| Allvac Ti-17 | 4995 | ||||||
Наимено- вание | Титановые сплавы-β | ||||||
Ti-13V-11Cr- 3Al | 4917 | TiV13Cr11Al3 | |||||
| Ti-8Mo-8V-2Fe-3Al | |||||||
| Ti-3Al-8V-6Cr-4Mo-4Zr | |||||||
| Ti-11.5Mo-6Zr-4.5Sn | |||||||
Наимено- вание | Титановые сплавы-чистые | ||||||
| Ti 99.5 | ASTM: B381F4 | Ti 99.5 | TA 6 | AIR:9182 T60 | |||
| Ti 99.6 | ASTM: B381F3 | Ti 99.6 | AIR: 9182 T50 | ||||
| Ti 99.7 | ASTM: B381F2 | Ti 99.7 | TA 2-5 | AIR: 9182 T40 | |||
| Ti 99.8 | ASTM: B381F1 | Ti 99.8 | TA 1 | AIR: 9182 T35 | |||
ARCTIC.OPL ECO LED TH Светодиодные пылевлагозащищенные светильники c узким корпусом
ARCTIC.OPL ECO LED TH
Серия светильников в узком корпусе (TH) со степенью защиты IP65 и высокой светоотдачей. Большое количество модификаций, различающихся габаритными размерами и световым потоком для замены светильников типа ЛСП.
Установка
Крепление светильника непосредственно на поверхность потолка или стен без использования монтажных пластин. Для установки светильника на подвесы необходимо заказывать свпециальные крепления: Комплект крепления светильника ARCTIC на трос с витым крюком (код заказа — 2069000330). Под заказ возможно изготовление светильника со сквозной проводкой.
Конструкция
Корпус SMC — полиэстер усиленный стекловолокном.
Оптическая часть
Опаловый рассеиватель (OPL) из поликарбоната крепится к корпусу защелками из полиамида. Под заказ возможна комплектация с защелками из нержавеющей стали. Тип светодиодов: SMD.
Тип источника света
LED
Комплектация
Светильник в сборе. Цветовая температура — 4000К под заказ.
Области использования
- Магазины / бутики
- Промышленные предприятия
- Складские объекты
- II
- IP65
- IK02/0,2 Дж
- УХЛ2
- от 0 до +40
- от -40 до +40
- True
Список моделей
| Название | Световой поток | Мощность | лм/Вт | Диаметр | Высота | Вес | Артикул | Базовая цена |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| ARCTIC.OPL ECO LED 600 TH 5000K | 1950 лм | 19 Вт | 103 | 671 мм | 110 мм | 1.5 кг | 1088000030 | 3 698 р |
| ARCTIC.OPL ECO LED 1200 TH 5000K | 3350 лм | 30 Вт | 112 | 1280 мм | 110 мм | 3.6 кг | 1088000010 | 5 463 р |
| ARCTIC.OPL ECO LED 1200 TH 4000K | 3300 лм | 32 Вт | 103 | 1280 мм | 110 мм | 3.6 кг | 1088000240 | 5 463 р |
| ARCTIC.OPL ECO LED 1500 TH 5000K | 4000 лм | 39 Вт | 103 | 1578 мм | 110 мм | 3.2 кг | 1088000020 | 6 295 р |
| ARCTIC.OPL ECO LED 1500 TH EM 5000K | 4000 лм | 39 Вт | 103 | 1578 мм | 110 мм | 3.9 кг | 1088000250 | 11 768 р |
| Кузов | Цвет | Черный |
|---|---|---|
| Габаритные размеры | Ширина | 946 мм (37-1 / 4 «) |
| Высота | 139 мм (5-1 / 2 «) | |
| Глубина | 404 мм (15-15 / 16 дюймов) | |
| Масса | Масса | 6.6 кг (14 фунтов 9 унций) без батарей |
| Клавиатура | Количество ключей | 61 |
| Сенсорное реагирование | Мягкий, средний, жесткий, фиксированный | |
| Другие контроллеры | Угловой изгиб | Есть |
| Ручки управления | Есть | |
| Дисплей | Тип | ЖК-дисплей (жидкокристаллический дисплей) |
| Язык | Английский | |
| Панель | Язык | Английский |
| Генерация тона | Технология генерации тона | Стерео сэмплирование AWM |
| Полифония | Количество полифоний (макс.) | 48 |
| Предустановка | Количество голосов | 758 (237 панельных тембров + 24 набора ударных / спецэффектов + 40 арпеджио + 457 тембров XGlite) |
| Избранные голоса | 8 Sweet! Голоса, 3 Круто! Голоса, 3 динамических голоса | |
| Совместимость | GM | Есть |
| XGlite | Есть | |
| Типы | DSP | 10 типов (назначаются на ручках управления) |
| Реверберация | 12 типов | |
| Хор | 5 типов | |
| Главный эквалайзер | 6 типов | |
| Гармония | 26 типов | |
| Функции | Dual / Layers | Есть |
| Сплит | Есть | |
| Арпеджио | 150 типов | |
| Подавитель мелодий | Есть | |
| Кроссфейд | Да (для внутреннего / AUX IN) | |
| Предустановка | Количество предустановленных стилей | 235 |
| аппликатура | Многопальцевый | |
| Управление стилем | ACMP ВКЛ / ВЫКЛ, СИНХРОНИЗАЦИЯ, СИНХРОНИЗАЦИЯ, СТАРТ / СТОП, ВВЕДЕНИЕ / ЗАВЕРШЕНИЕ / rit., ОСНОВНОЕ / АВТО ЗАПОЛНЕНИЕ, ТРЕК ВКЛ / ВЫКЛ | |
| Формат файла | Формат файла стилей (SFF) | |
| Прочие функции | Настройка в одно касание (OTS) | Есть |
| Расширяемость | Стиль расширения | 10 |
| Предустановка | Количество пазов | 35 |
| Кол-во секций | 5 (4 раздела + 1 музыкальный апогей / финал) | |
| Предустановка | Количество предустановленных композиций | 30 |
| Запись | Количество композиций | 10 |
| Кол-во дорожек | 6 (5 мелодий + 1 создатель стиля / грува) | |
| Объем данных | Прибл.19 000 нот (когда записаны только «мелодические» дорожки) | |
| Функция записи | Есть | |
| Совместимый формат данных | Воспроизведение | SMF (форматы 0 и 1) |
| Запись | Исходный формат файла (функция преобразования SMF 0) | |
| Время записи (макс.) | 80 минут (прибл. 0,9 ГБ) на композицию | |
| Формат | Воспроизведение | WAV (44,1 кГц, 16 бит, стерео) |
| Запись | WAV (44,1 кГц, 16 бит, стерео) | |
| Тип отбора проб | Обычный, Один выстрел, Петля | |
| Сэмплы (пресет / пользователь) | 5 | |
| Время выборки | Прибл.9,6 с | |
| Источники отбора проб | ВХОД ВСПОМ. | |
| Формат выборки | Исходный формат файла (16 бит, стерео) | |
| Частота дискретизации | 44,1 кГц | |
| Аудиоинтерфейс USB | 44,1 кГц, 16 бит, стерео | |
| Регистрация | Количество кнопок | 4 (х 8 банков) |
| Общий контроль | Метроном | Есть |
| Диапазон темпа | 11–280 | |
| Транспонировать | от -12 до 0, от 0 до +12 | |
| Тюнинг | 427.0 — 440,0 — 453,0 Гц (с шагом примерно 0,2 Гц) | |
| Настройка шкалы | Есть | |
| Разное | Кнопка PIANO | Да (кнопка Portable Grand) |
| Склад | Внутренняя память | Прибл. 1,73 МБ |
| Внешние диски | Флэш-накопитель USB | |
| Возможности подключения | ВХОД ПОСТОЯННОГО ТОКА | DC IN 12 В |
| ВХОД ВСПОМ. | Да (стерео-мини) | |
| Наушники | x 1 (ТЕЛЕФОНЫ / ВЫХОД) | |
| Педаль сустейна | Есть | |
| USB К УСТРОЙСТВУ | Есть | |
| USB К ХОСТУ | Да (MIDI / аудио: 44.1 кГц, 16 бит, стерео) | |
| Усилители | 6 Вт + 6 Вт (при использовании адаптера переменного тока PA-150) | |
| Динамики | 12 см x 2 | |
| Блок питания | Адаптеры переменного тока (PA-150 или аналог, рекомендованный Yamaha) или батареи (шесть щелочных (LR6), марганцевых (R6) или никель-металлгидридных аккумуляторных (HR6) батарей размера «AA») | |
| Потребляемая мощность | 8 Вт (при использовании адаптера переменного тока PA-150) | |
| Функция автоматического отключения питания | Есть | |
| Принадлежности в комплекте | Пюпитр | Есть |
| Сборник песен | Скачать с сайта | |
463 мм (18 дюймов), фиксатор со штифтом
- Обзор технических характеристик
- Ширина
18.2 дюйма (463 мм) - Объем
7,1 фут³ (200 л) - Вес
551,2 фунта (250 кг) - Толщина базовой кромки
1,3 дюйма (32 мм)
Ковши Cat® для тяжелых условий эксплуатации для экскаваторов-погрузчиков хорошо подходят для полукристаллических грунтов или там, где необходимо выламывать и удалять твердые насыпи.
- Ширина 18,2 дюйма (463 мм)
- Вместимость 7,1 фут3 (200 л)
- Вес 551,2 фунта (250 кг)
- Толщина базовой кромки 1.3 дюйма (32 мм)
- Радиус наконечника 45 дюймов (1144 мм)
- Тип интерфейса ()
Стандартное оборудование
Система впуска воздуха
- Выпускной коллектор из чугуна — боковой выпуск
- Впускной коллектор
Система контроля
- Генератор 12 В
- Стартер на 12 В
- Электронный запорный соленоид (ESOS)
Система охлаждения
- Насос охлаждающей жидкости с ременным приводом
- Реле температуры охлаждающей жидкости
- Вентилятор охлаждения
Топливная система
- ТНВД
- Накрутка топливного фильтра
Общий
- Блок цилиндров из чугуна
- Закрытый сапун
- Устройство для облегчения пуска свечей накаливания
- Возможность холодного пуска до –20 ° C (-4 ° F) (с поддержкой)
- Преодолеваемый подъём под углом 35 ° непрерывный
Масляная система
- Реле давления смазочного масла
- Картер смазочного масла
- Накрутка масляного фильтра
Дополнительное оборудование
Криоконсервация гемопоэтических стволовых клеток
Am J Hematol.Авторская рукопись; доступно в PMC 2007 12 ноября.
Опубликован в окончательной отредактированной форме как:
PMCID: PMC2075525
NIHMSID: NIHMS23297
Медицинский центр Роджера Уильямса, отделение трансплантации костного мозга, Восточное крыло, Провиденс, Родереспон,
Кому: Дэвиду Берцу, доктору медицины, доктору философии, Медицинский центр Роджера Уильямса, отделение трансплантации костного мозга, Восточное крыло, 825 Chalkstone Avenue, Providence, RI 02908-4735. Электронная почта: ten.labolgcbs@ZREB См. Другие статьи в PMC, в которых цитируется опубликованная статья.Abstract
Трансплантация стволовых клеток представляет собой важный подход к лечению многих злокачественных и незлокачественных заболеваний. В основе этих подходов лежит способность криоконсервировать клетки костного мозга для будущего использования. Этот метод обычно используется во всех аутологичных условиях и имеет решающее значение при трансплантации пуповинной крови. Различные криоконсерванты использовались с различными методами замораживания и оттаивания, как описано в следующих главах. Эффективность замораживания неоднократно доказывалась, и была установлена способность длительного хранения костного мозга к повторному заселению.Стандартные подходы, описанные здесь, используются во многих лабораториях, поскольку эта область продолжает развиваться.
Ключевые слова: стволовые клетки, костный мозг, криоконсервант, методы замораживания
ВВЕДЕНИЕ
Роль трансплантации гемопоэтических стволовых клеток в лечении гематологических и негематологических злокачественных новообразований быстро возрастает. В определенных ситуациях свежие стволовые клетки могут использоваться при аллогенной трансплантации. Если передача от донора к реципиенту может быть осуществлена в течение 72 часов, протоколы предварительного хранения при температурах выше нуля должны быть на месте.Однако современные терапевтические стратегии требуют криоконсервации клеток-предшественников практически для всех аутологичных и многих аллогенных трансплантатов. Доказано, что эта стратегия безопасна и не связана со значительными неблагоприятными исходами, связанными с невозможностью приживления, болезнью трансплантата против хозяина (GVHD) или неудачей приживления [1].
Процесс криоконсервации важен для всех типов сбора стволовых клеток, но, возможно, особенно важен для пуповинной крови (UCB).Фактический трансплантат здесь собирают во время рождения и используют позже для еще, на момент сбора урожая, часто неопределенного реципиента. UCB обычно хранится в государственных или частных банках пуповинной крови. Государственные банки пуповинной крови, как правило, являются некоммерческими организациями, которые предлагают донорское отделение соответствующим получателям через национальные или международные реестры потенциальным нуждающимся реципиентам [2]. В банках пуповинной крови хранятся донорские образцы для донора или, в случае государственных банков, для неизвестного получателя в течение неопределенного периода времени.В настоящее время насчитывается около 170 000 замороженных единиц в 37 регистрах пуповинной крови в 21 стране. На сегодняшний день пересажено две тысячи девятьсот единиц, и взрослые получили около одной трети этих единиц [3].
Процесс криоконсервации включает в себя следующие общие компоненты:
Сбор донорских клеток, который влечет за собой фактический сбор образца и уменьшение объема.
Добавление криоконсервантов
Фактическая процедура замораживания
Оценка жизнеспособности замороженного блока примерно через 72 часа
Процедура размораживания
Промывка и кондиционирование донного блока до трансплантации
Ни один метод криоконсервации не применялся повсеместно.В разных центрах трансплантации возможны различия в технике. Наш обзор показал, что за последние 15 лет наблюдались небольшие изменения [4]. В нашем учреждении мы используем стандартизированный протокол NIH для сохранения образцов аллогенных и аутологичных периферических гемопоэтических стволовых клеток и трансплантатов костного мозга.
Мы собираем гемопоэтические стволовые клетки-предшественники с минимальными манипуляциями, как определено Фондом аккредитации терапии гемопоэтическими клетками (FAHCT), с минимальной дозой клеток не менее 2.5 × 10 6 –5,0 × 10 6 CD34 (+) клеток / кг массы тела, как в настоящее время считается стандартом [5]. Затем образец центрифугируется для образования осадка, богатого клетками. В аутотрансплантатах используется донорская плазма. Супернатант из этого процесса криопреципитации используется для повторного разжижения клеток осадка после добавления раствора гепаринизированного раствора плазмалита и 10% ДМСО (диметилсульфоксида). Обычно это приводит к концентрации клеток в криоконсервате 500 × 10 -6 клеток.Мы храним костный мозг или продукт стволовых клеток периферической крови при исходной температуре –4 ° C [6]. Затем образец замораживают до целевой температуры от –156 ° C (при хранении в паровой фазе) до –196 ° C (при хранении в жидкой фазе), в зависимости от того, где в контейнере хранится образец. Чтобы гарантировать целостность донорской единицы до миелоаблативной терапии, проводится повторная оценка жизнеспособности единицы с использованием анализа трипанового синего и, если это сомнительно, анализа йодида пропидия. Перед самой инфузией стволовых клеток образец быстро размораживают на водяной бане с температурой 37 ° C.
Некоторые элементы процедуры криоконсервации все еще остаются предметом обсуждения. Опубликованы алгоритмы, различающиеся температурой замерзания, скоростью замерзания, криоконсервантами, долговечностью, температурой оттаивания и скоростью оттаивания. В этой статье будет рассмотрен статус литературы по некоторым из этих элементов [4,7,8].
ТЕМПЕРАТУРА
Температура, используемая для криопрезервации гемопоэтических стволовых клеток за последние пятнадцать лет, составляла −196, −156 или −80 ° C, что отражает температуры хранения в жидком и парообразном азоте и в механических морозильных камерах для криоконсервации. соответственно.Развитие использования криоконсервантов происходило от более низких температур примерно -196 ° C в 1980-х годах до примерно -80 ° C в 1990-х годах [2,9–16]. Аналогичные тенденции наблюдаются и для изолированных стволовых клеток пуповины. Стандартные температуры, используемые в настоящее время, составляют от –196 до –80 ° C [17–19]. В дополнение к недавним сообщениям о распространении инфекционных агентов (т. Е. Аспергилл, а также распространения вирусов) через жидкую фазу резервуаров с азотом, в настоящее время рекомендуемые оптимальные условия хранения находятся в фазе парообразного азота при -156 ° C.Механические морозильники могут стать жизнеспособной альтернативой.
Кроме того, в нескольких исследованиях изучалась возможность хранения HSC при температуре выше нуля, при 4 ° C. Доклиническое исследование, в котором изучали PBSC, мобилизованные в аутологичной плазме с помощью анализов клоногенности и жизнеспособности после хранения, показало, что хранение до пяти дней является безопасным [20]. Небольшая серия случаев, проведенная Руисом-Аргуэльесом и др. успешно использовали PBPC после 96 часов хранения при 4 ° C для спасения после химиотерапии высокими дозами [21].
СКОРОСТЬ ЗАМОРАЖИВАНИЯ
Скорость замораживания широко обсуждалась в литературе.Техника замораживания с контролируемой скоростью по-прежнему считается стандартной, в основном из-за того, что выделение тепла в переходной или эвтактической точке (около 4 ° C) считается вредным для популяции стволовых клеток. В этот момент молекулы воды в замороженном блоке находятся в точном молекулярном порядке, что приводит к термодинамическому выделению тепла термоядерного синтеза.
При замораживании с контролируемой скоростью концентрированные стволовые клетки замораживаются со скоростью 1-2 ° C / мин до температуры около -40 ° C.Затем процесс замораживания до целевого значения -120 ° C выполняется в более быстром темпе, примерно 3-5 ° C / мин. Для стволовых клеток пуповины, костного мозга и PBSC процесс замораживания с контролируемой скоростью считается стандартным [22–24], и в различных отчетах было обнаружено, что он превосходит методы неконтролируемого замораживания. Эта процедура занимает много времени и требует наличия персонала со специальными знаниями. Следовательно, было оценено использование замораживания с неконтролируемой скоростью, при котором образец сначала охлаждают до -4 ° C, а затем сразу помещают в морозильную камеру при -80 ° C или помещают в жидкую фазу азота.В нескольких отчетах [9,12,13] установлено, что неконтролируемый метод безопасен и показывает результаты, сопоставимые с процессом с контролируемой скоростью для BM и PBSC. Контролируемое исследование, проведенное Perez-Oteyza et al. [14] показали, что подходы к замораживанию с контролируемой и неконтролируемой скоростью сравнимы с точки зрения тестирования жизнеспособности и что только статистически значимое снижение клональности CFU-GM может быть обнаружено в ситуации неконтролируемого замораживания. Недавние исследования показали, что неконтролируемое замораживание также является жизнеспособным подходом для стволовых клеток UCB [25,26].Не существует единого мнения о значимости компенсации теплоты плавления во время процедуры замораживания [6]. Однако исследование Balint et al. подчеркнули важность этого вмешательства, сравнив пять различных протоколов замораживания [6]. Протоколы, использующие пятиступенчатый подход к контролируемому замораживанию, компенсирующий тепло плавления, обеспечивают лучшую жизнеспособность после размораживания.
ДОЛГОВЕЧНОСТЬ
Фактическая долговечность, определяемая как время, в течение которого стволовые клетки могут сохраняться, все еще не ясна.Жизнеспособность стволовых клеток при криоконсервации подвергалась сомнению в различных исследованиях после 6 месяцев криоконсервации [10]. Дальнейшие исследования продемонстрировали длительное время замораживания при полном сохранении функции стволовых клеток.
Для оценки функциональной способности к восстановлению кроветворения сначала замороженных, а затем размороженных образцов используются несколько анализов на замену. В то время как BFU-E и CFU-GM, по-видимому, нарушаются раньше в ходе криоконсервации, восстановление ядерных клеток (NC) и клеток CD34 + и фактическое приживление у мышей NOD / SCID, по-видимому, сохраняются в течение более длительного периода времени [ 2,9,12,14 15,27,28].Эти наблюдения первоначально были сделаны в костном мозге и PBSC, аналогичные наблюдения были сделаны на стволовых клетках UBC [18,29–33]. Анализ на мышах NOD / SCID в настоящее время считается наиболее ценным анализом для оценки гематологического восстановления препаратов HSC [34–37], но обычно не является практичным. После Кобылки и др. [38] и Mugishima et al. [39] доказали надежность через 12 и 15 лет с помощью проточной цитометрии и клоногенного анализа соответственно, а Broxmeyer et al.[30] выполнили переоценку его длительно сохраняемых единиц CB, их долговечность до 15 лет была установлена с использованием гемопоэтического восстановления у мышей NOD / SCID. Клиническая валидность доклинических исследований была задокументирована в отдельных отчетах, когда успешное трехлинейное приживление было достигнуто с помощью BM, хранимого в течение 7 лет [26]. Систематический обзор, оценивающий совместный опыт Бригама и женской больницы и группы EBMT [11], показал, что HSC можно эффективно криоконсервировать на срок до 11 лет.Ретроспективное исследование, проведенное в Сиэтле, показало полное трехлинейное восстановление у пациентов, получавших HSC, которое сохранялось до 7,8 лет без стойких вредных эффектов [27].
КОНЦЕНТРАЦИЯ КЛЕТОК
Реинфузия криоконсервированных клеток была связана с различной токсичностью, которая частично объяснялась общим объемом и криоконсервантами в растворе [7,8,40]. В прошлом высказывались опасения, что высокая концентрация клеток в криоконсервате может привести к токсичности для клеток.Следовательно, первоначально предложенная концентрация криоконсервированных клеток не превышала 2 × 10 –7 / мл NC [11,41]. В результате объем криоконсервации составит около 7 л [10] на пациента. Необходимые места для хранения и трудозатраты для промывки трансплантата перед повторной инфузией будут огромными [4].
После того, как первоначальные мышиные модели были признаны безопасными, Rowley et al. установили, что высокие концентрации клеток (до 5,6 × 10 –8 клеток / мл) в криоконсервате хорошо переносятся, не связаны со значительным неблагоприятным воздействием на клетки и приводят к хорошим клиническим исходам [4].Подобные выводы были сделаны из последующих исследований Kawano et al. [42] и Cabezudo et al. [43]. Для практических целей кажется достижимой концентрация клеток 200 × 10 −6 / мл [4,44,45].
КРИОПРЕСЕРВАНТЫ
Криоконсерванты являются необходимыми добавками к концентратам стволовых клеток, поскольку они ингибируют образование внутри- и внеклеточных кристаллов и, следовательно, гибель клеток. Стандартный криопротектор — ДМСО, предотвращающий повреждение живых клеток от замерзания [46].Первоначально он был использован в медицине как противовоспалительный реагент и до сих пор иногда используется при аутоиммунных расстройствах [47, 48]. Обычно он используется в концентрации 10% в сочетании с физиологическим раствором и сывороточным альбумином [2,9,13,49]. Было установлено, что это безопасный и не токсичный агент для стволовых клеток [49]. Однако ДМСО связан с клинически значимым профилем побочных эффектов. Тошнота, рвота и спазмы в животе возникают примерно в половине случаев [50]. Другие побочные эффекты включают сердечно-сосудистые [7], респираторные [51,52], ЦНС [8,53–55], почечные, гемолитические [56] и гепатотоксические проявления.Сообщалось о смертельных случаях, связанных с токсичностью ДМСО [57].
Недавнее международное анкетирование, включающее данные из 97 центров трансплантации EBMT, показало, что токсичность, связанная с ДМСО, кроме тошноты и рвоты, наблюдается примерно в одной из 50 трансплантатов со средней частотой 2,2% от всех введенных единиц. Побочные эффекты со стороны сердечно-сосудистой системы были наиболее часто наблюдаемой группой нежелательных явлений в 27% участвующих центров. Респираторные нарушения наблюдались у 17%, токсичность ЦНС, включая судороги, у 5% и побочные эффекты со стороны почек у 5% [58].
На основании этих соображений токсичности были опробованы новые подходы. Было установлено, что более низкие дозы ДМСО, варьирующиеся от 2,2 до 6% [9,10,12,59,60], эффективны для костного мозга и PBSC, а также для UCB. Напротив, в югославском исследовании сравнивали 10% -ную концентрацию ДМСО с более низкими концентрациями при различных скоростях замораживания. В этом исследовании in vitro было доказано, что криоконсервация 10% ДМСО превосходит более низкие концентрации [6]. Для усиления эффекта криоконсерванта комбинация ДМСО и внеклеточного криопротектора гидроксиэтилкрахмала (HES) успешно использовалась в PBSC, трансплантатах костного мозга [12,13] и клетках UCB.
Альтернативными методами криоконсервации являются пропиленгликоль, комбинация альфа-токоферола, каталазы и аскорбиновой кислоты, а также димер глюкозы трегалоза в качестве внутри- и внеклеточного криопротектора [28,32,61].
Интересные доклинические данные из Германии позволяют предположить, что активация каспаз, особенно во время процесса оттаивания, может вызвать апоптоз и, следовательно, способствовать криовоздействию трансплантатов трансплантата. Добавление ингибитора каспаз zVAD-fmk в качестве криоконсерванта представляет интригующую перспективу на будущее [62].
РАЗМОРАЖИВАНИЕ
Было предложено несколько методов оттаивания. Стандартный метод — нагревание на водяной бане при 37 ° C до исчезновения всех кристаллов льда [13]. В немецком исследовании сравнивалось размораживание криоконсервированных единиц в теплой водяной бане с сухим теплом, прикладываемым гелевыми подушечками при 37 ° C. Жизнеспособность и клоногенный потенциал были сопоставимы с тенденцией к меньшему заразному заражению при сухом методе [63]. Различные исследования изучали сохранение функции при инкубации размороженных единиц при 0–37 ° C [13,31].Никаких существенных различий не было обнаружено в исследовании Yang et al. которые сравнили инкубацию размороженного блока при 0, 20 и 37 ° C в течение 20 минут [31]. Используемый криоконсервант оказался нетоксичным для стволовых клеток в процессе криоконсервации, как уже было установлено в предыдущих исследованиях [4,49]. Уменьшение содержания ДМСО при температуре оттаивания — интригующая концепция из-за профиля клинической токсичности этого криоконсерванта. Следовательно, эффект снижения содержания ДМСО в растворе для оттаивания посредством промывки или разбавления был исследован [59,64].Наблюдалось незначительное влияние на жизнеспособность стволовых клеток или его отсутствие. Автоматический метод вымывания криоконсерванта доказал свою применимость на доклинических моделях [65].
ПРОЦЕДУРА ПРОМЫВКИ
Для стволовых клеток пуповинного происхождения, периферической крови и костного мозга процесс вымывания криоконсерванта после оттаивания все еще можно считать стандартным [19,32], поскольку предполагается, что ДМСО обладает токсическим действием. на стволовые клетки. Это было поставлено под сомнение в нескольких более поздних отчетах, которые предполагали устойчивость стволовых клеток к воздействию ДМСО [13,49].Отмывка самого популярного криоконсерванта имеет очевидные преимущества для реципиента, т.е. снижает токсичность, поскольку степень токсичности ДМСО пропорциональна количеству ДМСО, содержащегося в инфузированном растворе стволовых клеток [66]. Было также высказано предположение, что отмывка от ДМСО может улучшить приживление [67]. Это оспаривается [68].
Текущий стандартный протокол промывки соответствует протоколу Нью-Йоркского центра крови [19], в котором двухэтапное разведение размороженной единицы стволовых клеток с 2.5% сывороточного альбумина человека и 5% декстрана 40 затем центрифугировали при 10 ° C в течение 10 мин. Затем удаляют супернатант и снова дважды добавляют раствор HSA и декстрана до конечной концентрации ДМСО менее 1,7%. Промытый раствор настаивается при первой возможности. Хотя было установлено, что эта процедура безопасна и связана с разумным восстановлением NC и анализами предшественников [69], она также очень трудоемка и не свободна от потери клеток [70,71]. Недавно были представлены новые автоматизированные устройства для промывки клеток с многообещающими результатами [50,65,72,73].
КОНТЕЙНЕРЫ ДЛЯ ХРАНЕНИЯ
Международное общество клеточной терапии (ISCT) описало на своем веб-сайте информации о поставщиках криоконтейнеров девять различных продуктов для криоконтейнеров. Шесть из них основаны на этинилвинилацетате (EVA) и обычно подвергаются гамма-облучению.
Товарные знаки:
Cryocyte / Baxter
CellFlex / Maco Pharma
Cell Freeze ™ Charter Medical
Pall Медицинский мешок для замораживания Cryoreome 905/05 Inc.
Thermogenesis Corp./ Мешок для замораживания 80346-0
Другие продукты, не основанные на этиленвинилацетате:
American Fluoroseal / FEP (тефлон)
Fresenius Hemocarelon
Teflon / HemofreezeOrigen Biomedical Inc./Permalife Bag, FEP / Polyimide
Были предприняты другие подходы. Чешская группа опубликовала свой успешный опыт использования контейнера для криоконсервации из нержавеющей стали, специально разработанного для PBSC [74].В США наиболее часто используемым криоконтейнером является мешок для замораживания из этиленвинилацетата (Yang, 2005 [75]), [76].
Использование специальных контейнеров, полиэтиленовых пакетов из ПВХ и полиолефина и полиэтиленовых флаконов для криоконсервации дало разные результаты в отношении жизнеспособности хранимых образцов. Пакеты из ПВХ и полиолефина показали удовлетворительные результаты, в то время как флаконы для криоконсервации из полиэтилена не показали этого в одном исследовании [2]. Группа из Бостона предположила, что криопакеты из полиолефина обладают более длительным сроком службы, чем пакеты из ПВХ.
ИНФЕКЦИОННЫЕ СООБРАЖЕНИЯ
Микробное заражение трансплантатов представляет значительную опасность для реципиента с тяжелой иммуносупрессией. По оценкам FDA, семи смертей, связанных с трансплантацией, в год можно избежать за счет устранения инфекции, связанной с инфузиями донорских клеток [77]. Общие продемонстрированные уровни микробиологического загрязнения составляют 0–4,5% [27,78–83].
Основные части культивируемых бактерий — это кожная флора и комменсальные бактерии. Остальная часть в основном состоит из кишечных бактерий.Следует отметить, что криогенные клетки, полученные из костного мозга, с гораздо большей вероятностью будут заражены патогенами, что объясняется процессом сбора. Уровни контаминации между PBSC и костным мозгом значительно различаются до шестнадцати раз (0,23% для PBSC и 3,8% для BM) [84].
отображает частоту, с которой различные патогены культивировались из донорских единиц в четырех различных исследованиях, посвященных бактериальному загрязнению продуктов стволовых клеток [78,82–84]:
ТАБЛИЦА I
Культивированные организмы / общая частота положительных культур
| Посевы микроорганизмов | Общая частота положительных культур (%) | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Staph.epidermidis и другие коагулазонегативные Staphylococcus (CNS) | 3–11,7 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Propionibacterium acni | 0,6–2,2 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Staphylococcus | 9|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Staphylococcus
Процесс криоконсервации был связан с уменьшением количества обнаруживаемых микроорганизмов. В одном немецком исследовании обнаружение Staphylococcus epidermidis было снижено в среднем на 9,3%, а Escherichia coli — на 18,1% [85]. Кроме того, в нескольких исследованиях сообщалось о возникновении положительных культур после размораживания [27,83,86].Это предполагает риск заражения флаконов с культурой (то есть не вызванного донорским трансплантатом). Частота тяжелого сепсиса при вливании стволовых клеток, культивированных с положительным результатом на комменсалы и бактерии кожной флоры, невысока, и большинство приступов лихорадки, развивающихся после их вливания, можно лечить антибиотиками [83]. Стабильность вирусов в жидком азоте подтверждена документально [87]. Английский источник опубликовал эпидемическую вспышку гепатита В у реципиентов аутологичного костного мозга [88], которая впоследствии была связана анализом нуклеотидной последовательности с другим криоконсервантом, хранящимся в том же контейнере [89].Последующий анализ обломков в жидкой азотной фазе того же контейнера продемонстрировал распространение патогена через жидкую фазу. Сообщалось о подобных вспышках [90]. Чтобы предотвратить такие случаи, мы храним инфекционные консервы отдельно и обеспечиваем защитные рукава вокруг пакетов с криоконсервантами, что, как сообщалось ранее, было эффективным [91]. Для предотвращения инфекционных осложнений при инфузии донорских стволовых клеток следует применять следующие меры:
ЭМБРИОНАЛЬНЫЕ СТВОЛОВЫЕ КЛЕТКИЭмбриональные стволовые клетки демонстрируют другое биологическое поведение при криоконсервации.Из-за огромного потенциала эмбриональных стволовых (ES) клеток для трансплантационной терапии недавние исследования оценили способ хранения этих хрупких клеток. Одной из трудностей криоконсервации этих клеток является их чрезвычайная хрупкость, приводящая к плохой выживаемости клеток при стандартных процедурах замораживания, обычно в пределах 1% [93]. Мало того, что клетки имеют низкий выход при стандартных протоколах замораживания, клетки также индуцируются к дифференцировке. Ware et al.исследовали метод с использованием процедуры замораживания с очень медленной контролируемой скоростью и 10% ДМСО. Было обнаружено, что наряду с очень низкой скоростью замораживания, быстрое оттаивание имеет решающее значение для успешного хранения [93]. Исследование, проведенное в Висконсине, выявило HES (гидроксиэтилкрахмал) как ценную криодобавку во время медленных процедур замораживания и стеклования [94]. Были разработаны некоторые методы, в которых клетки ES замораживают в 24-луночных планшетах с минимальной средой и 10% ДМСО при -80 ° C. Была подчеркнута важность быстрого размораживания путем добавления минимального количества среды при температуре тела.В исследовании Ure et al. Все 227 протестированных клонов росли успешно, хотя молекулярные и фенотипические исследования не проводились в этом случае для подтверждения клеточного происхождения [95]. Адамс и др. успешно криоконсервировали первичные гепатоциты в растворе Университета Висконсина, содержащем FBS и DMSO, в течение 8 месяцев с сохранением жизнеспособности и ключевых фенотипических свойств [96]. Недавнее доклиническое исследование Milosevic et al. подчеркнули роль ингибиторов каспаз в качестве добавок к криоконсерванту в эмбриональных мышиных нервных предшественниках, подход, который ранее применялся в отношении гемопоэтических предшественников [62].Жизнеспособность 60–70% была достигнута путем добавления ингибитора каспаз zVAD-fmk к различным криоконсервантам через пять дней [99]. Одна из теорий, объясняющих причину гибели клеток, — это образование кристаллов льда в цитоплазме во время замораживания [98]. Процесс витрификации делает попытки заморозить ES-клетки, избегая образования льда. Reubinoff был первым, кто применил этот метод с использованием метода витрификации с открытой вытянутой соломинкой, который ранее был успешным при криоконсервации эмбрионов.Эта процедура, в ходе которой оценивались более хрупкие ES-клетки человека, доказала 100% жизнеспособность скоплений ES-клеток, которые все генерировали колонии, по сравнению с 70% восстановлением после оттаивания и 16% дифференцировкой с использованием стандартных методов [99]. Тестовые клетки также имели нормальный кариотип, экспрессию OCT-4 и развивались тератомы в ксенотрансплантатах мышей SCID [100]. После этого эксперимента другие исследователи изучали витрификацию соломинок с закрытым запечатыванием или альтернативные замораживающие среды и упрощенный метод витрификации [100,101], который показал аналогичные результаты. АНАЛИЗЫ ФУНКЦИОНАЛЬНЫХ ЗАМЕЩЕНИЙНаиболее часто используемые клоногенные анализы — это CFU-Sd12 [6], анализ на мышах, MRA (CFU-GM) [6,27,32,38,66,102], CFU-GEMM [6,103], BFU-E [27,38,66,103] и анализ клеток, инициирующих длительную культуру [104] (LTC-IC) (). Тем не менее, несмотря на доступность этих анализов для количественной и качественной оценки клоногенного потенциала гемопоэтических клеток в суспензии, окончательная оценка потенциала приживления основана на доказательствах восстановления кроветворения у миелоаблированных млекопитающих. Клоногенные анализы. Клетки помещают в мягкий агар и инкубируют. В установленные периоды времени подсчитывают колонии клеток; это обеспечивает in vitro суррогат потенциала восстановления кроветворения. (A) КОЕ / GM (B) КОЕ / GEMMA. Различные методы, которые использовались для человеческих клеток, включают подсчет клеток для NC [32,66,105] и CD34 + клеток [61,105], исключение триптанового синего для определения жизнеспособности [94,103], 7-аминоактиномицин [29,31], приживление в NOD / Мыши SCID и клоногенные анализы [27]. Хотя не достигнуто абсолютного консенсуса относительно оптимального метода оценки функциональности донорского трансплантата, для оценки функциональной способности к восстановлению кроветворения сначала замороженного, а затем размороженного образца было использовано несколько анализов на замену.К широким категориям анализов, используемых для этой цели, относятся анализы подсчета клеток, анализы жизнеспособности, клоногенные эксперименты и приживление донорских клеток у мышей NOD / SCID.
В то время как BFU-E и CFU- ГМ, по-видимому, нарушается раньше в ходе криоконсервации, восстановление клеток NC и CD 34+ и фактическое приживление у мышей NOD / SCID, по-видимому, сохраняются в течение более длительного периода времени [2,9,12,14,15 , 27,28].Эти наблюдения были сделаны в костном мозге и PBSC, и для UBC были сделаны те же наблюдения [18,29–33]. Yang et al. оценили два различных функциональных теста, количество CD 34 и CFU-GM, сопоставив результаты анализа до и после размораживания с приживлением у 52 пациентов. Анализ до и после размораживания хорошо коррелировал друг с другом и с фактическим клиническим приживлением (Yang et al., 2005, [24]). Общее описание стандартной техники криоконсервации представлено в. Процесс криоконсервации костного мозга, стволовых клеток периферической крови и UCB. СноскиСпонсор гранта: NIH; Номера контрактов: 1P20RR018757, 5R01, DK61858, 5KO DK064980. Ссылки1. Stockschlaeder M, Hassan HT, Krog C. Долгосрочное наблюдение за лейкемическими пациентами после родственной криоконсервированной трансплантации костного мозга. Br J Haematol. 1997. 96: 382–386. [PubMed] [Google Scholar] 2. Валерий ЧР, Пивачек ЛЕ. Влияние температуры, продолжительности хранения в замороженном виде и контейнера для замораживания на измерения in vitro в мононуклеарных клетках периферической крови человека.Переливание. 1996; 36: 303–308. [PubMed] [Google Scholar] 3. Sanz MA. Трансплантация пуповинной крови больным лейкемией — реальная альтернатива для взрослых. N Engl J Med. 2004; 351: 2328–2330. [PubMed] [Google Scholar] 4. Роули С.Д., Бенсингер В.И., Гули Т.А., Бакнер С.Д. Влияние концентрации клеток на криоконсервацию стволовых клеток костного мозга и периферической крови. Кровь. 1994; 83: 2731–2736. [PubMed] [Google Scholar] 5. Ребулла П. Банк пуповинной крови 2002: 112 010 из 7 914 773 шансов. Переливание. 2002; 42: 1246–1248.[PubMed] [Google Scholar] 6. Балинт Б., Иванович З., Петаков М. и др. Протокол криоконсервации, оптимальный для восстановления предшественников, не является оптимальным для сохранения способности к репопуляции костного мозга. Пересадка костного мозга. 1999; 23: 613–619. [PubMed] [Google Scholar] 7. Дэвис Дж. М., Роули С. Д., Брейн Г. Г., Пиантадози С., Сантос Г. В.. Клиническая токсичность инфузии криоконсервированного трансплантата костного мозга. Кровь. 1990; 75: 781–786. [PubMed] [Google Scholar] 8. Хойт Р., Сзер Дж., Григг А. Неврологические события, связанные с инфузией криоконсервированных клеток-предшественников костного мозга и / или периферической крови.Пересадка костного мозга. 2000; 25: 1285–1287. [PubMed] [Google Scholar] 9. Cilloni D, Garau D, Regazzi E, Sammarelli G и др. Примитивные гематопоэтические предшественники в мобилизованной крови избавляются от неконтролируемой скорости замораживания. Пересадка костного мозга. 1999; 23: 497–503. [PubMed] [Google Scholar] 10. Гальмес А., Бесалдуч Дж., Баргай Дж. И др. Длительное хранение при -80 ° C гемопоэтических клеток-предшественников с 5% диметилсульфоксидом в качестве единственного криопротектора. Переливание. 1999; 39: 70–73. [PubMed] [Google Scholar] 11.Эйрд В, Лабопин М, Горин NC, Антин Дж. Длительная криоконсервация стволовых клеток человека. Пересадка костного мозга. 1992; 9: 487–490. [PubMed] [Google Scholar] 12. Halle P, Tournilhac O, Knopinska-Posluszny W, et al. Неконтролируемая скорость замораживания и хранения при -80 ° C, только с 3,5% ДМСО в криопротекторном растворе для 109 трансплантаций аутологичных клеток-предшественников периферической крови. Переливание. 2001; 41: 667–673. [PubMed] [Google Scholar] 13. Катаяма Ю., Яно Т., Бесшо А. и др. Влияние упрощенного метода криоконсервации и размораживания на стволовые клетки периферической крови.Пересадка костного мозга. 1997. 19: 283–287. [PubMed] [Google Scholar] 14. Перес-Отейза Дж., Борнштейн Р., Коррал М. и др. Контролируемая скорость по сравнению с неконтролируемой скоростью криоконсервации клеток-предшественников периферической крови: проспективное многоцентровое исследование. Группа криобиологии и биологии трансплантации костного мозга (CBTNO), Испания. Haematologica. 1998; 83: 1001–1005. [PubMed] [Google Scholar] 15. Мацумото Н., Йошизава Х., Кагаму Х. и др. Успешное жидкое хранение стволовых клеток периферической крови при отрицательной температуре ниже нуля.Пересадка костного мозга. 2002; 30: 777–784. [PubMed] [Google Scholar] 16. Humpe A, Riggert J, Vehmeyer K, et al. Сравнение количества клеток CD34 + и роста колоний до и после криоконсервации образцов предшественников периферической крови и стволовых клеток: влияние предшествующей химиотерапии. Переливание. 1997. 37: 1050–1057. [PubMed] [Google Scholar] 17. Ван С.Ю., Сюй М.Л., Хуанг М.З. и др. Активность in ex vivo размножения миелоидных клеток-предшественников пуповинной крови до и после криоконсервации. Acta Haematol.2001; 105: 38–44. [PubMed] [Google Scholar] 18. Рубинштейн П., Розенфилд Р. Э., Адамсон Дж. В., Стивенс К. Э.. Сохраненная плацентарная кровь для восстановления неродственного костного мозга. Кровь. 1993; 81: 1679–1690. [PubMed] [Google Scholar] 19. Рубинштейн П., Добрила Л., Розенфилд Р. Э. и др. Обработка и криоконсервация плацентарной / пуповинной крови для восстановления неродственного костного мозга. Proc Natl Acad Sci USA. 1995; 92: 10119–10122. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 20. Hechler G, Weide R, Heymanns J, Koppler H, Havemann K.Хранение некриоконсервированных стволовых клеток периферической крови для трансплантации. Ann Hematol. 1996. 72: 303–306. [PubMed] [Google Scholar] 21. Руис-Аргуэльес Г.Дж., Руис-Аргуэльес А., Перес-Романо Б., Марин-Лопес А., Ларрегина-Диез А., Апреза-Молина М.Г. Стволовые клетки периферической крови, мобилизованные на филграстим, можно хранить при 4 ° C и использовать в аутотрансплантатах для спасения высоких доз химиотерапии. Am J Hematol. 1995. 48: 100–103. [PubMed] [Google Scholar] 22. Lewis JP, Passovoy M, Conti SA, McFate PA, Trobaugh FE., Jr. Влияние режимов охлаждения на трансплантационный потенциал костного мозга.Переливание. 1967; 7: 17–32. [PubMed] [Google Scholar] 23. Мериман Х.Т., Уильямс Р.Дж., Дуглас М.С. Повреждение от обморожения от «воздействия раствора» и его предотвращение с помощью естественной или искусственной криозащиты. Криобиология. 1977; 14: 287–302. [PubMed] [Google Scholar] 24. Ketheesan N, Whiteman C, Malczewski AB, Hirst RG, La Brooy JT. Влияние криоконсервации на иммуногенность клеток пуповинной крови. Transfus Apher Sci. 2004. 30: 47–54. [PubMed] [Google Scholar] 25. Пачковска Э. Замораживание клеток пуповинной крови в морозильных камерах (-80 ° C) Ann Acad Med Stetin.2002. 48: 117–133. [PubMed] [Google Scholar] 26. Вальтер З., Шостек М., Вегларска Д. и др. Методы замораживания, оттаивания и оценки жизнеспособности гемопоэтических стволовых клеток. Przegl Lek. 1999; 56: 34–39. [PubMed] [Google Scholar] 27. Аттариан Х., Фенг З., Бакнер С.Д., МакЛауд Б., Роули С.Д. Длительная криоконсервация костного мозга для аутотрансплантации. Пересадка костного мозга. 1996. 17: 425–430. [PubMed] [Google Scholar] 28. Бьюкенен С.С., Гросс С.А., Акер Дж. П., Тонер М, Карпентер Дж. Ф., Пайетт Д. В.. Криоконсервация стволовых клеток с использованием трегалозы: оценка метода с использованием линии гемопоэтических клеток человека.Stem Cells Dev. 2004. 13: 295–305. [PubMed] [Google Scholar] 29. Сяо М., Дули, округ Колумбия. Оценка жизнеспособности клеток и апоптоза пуповинной крови человека после хранения. J Hematother Stem Cell Res. 2003. 12: 115–122. [PubMed] [Google Scholar] 30. Broxmeyer HE, Srour EF, Hangoc G, Cooper S, Anderson SA, Bodine DM. Высокоэффективное восстановление функциональных гемопоэтических клеток-предшественников и стволовых клеток из криоконсервированной пуповинной крови человека в течение 15 лет. Proc Natl Acad Sci USA. 2003. 100: 645–650. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 31.Ян Х., Акер Дж. П., Хэннон Дж., Мишта-Лейн Х., Акабуту Дж. Дж., МакГанн Л. Э. Повреждение и защита клеток крови ЯК при криоконсервации. Цитотерапия. 2001; 3: 377–386. [PubMed] [Google Scholar] 32. Вудс Э.Дж., Лю Дж., Дерроу К.В., Смит Ф.О., Уильямс Д.А., Кризер Дж.К. Осмометрические характеристики и проницаемость CD34 + клеток плаценты / пуповинной крови человека и их применение для криоконсервации. J Hematother Stem Cell Res. 2000. 9: 161–173. [PubMed] [Google Scholar] 33. Чжан ХБ, Ли К., Яу К.Х. и др. Трегалоза улучшает криоконсервацию пуповинной крови в доклинической системе и увеличивает восстановление КОЕ, клеток, инициирующих долгосрочное культивирование, и репопулирующих клеток, не страдающих ожирением, диабетиков с ТКИН.Переливание. 2003. 43: 265–272. [PubMed] [Google Scholar] 34. Формор Дж., Лапидот Т., Пфлумио Ф. и др. Незрелые предшественники пуповинной крови человека приживаются и размножаются до высоких уровней у мышей с тяжелым комбинированным иммунодефицитом. Кровь. 1994; 83: 2489–2497. [PubMed] [Google Scholar] 35. Формор Дж., Лапидот Т., Пфлумио Ф. и др. Мыши SCID как модель кроветворения пуповинной крови человека in vivo. Кровяные клетки. 1994; 20: 316–320. обсуждение 320–322. [PubMed] [Google Scholar] 36. Бок Т.А., Орлик Д., Данбар С.Э., Броксмайер Е.П., Бодин Д.М.Улучшенное приживление гемопоэтических клеток человека у мышей с тяжелым комбинированным иммунодефицитом (SCID), несущих трансгены цитокинов человека. J Exp Med. 1995; 182: 2037–2043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 37. Орази А., Браун С.Е., Броксмайер Х. Комментарий: Иммуногистохимия представляет собой полезный инструмент для изучения приживления клеток человека в моделях трансплантации мышей SCID. Кровяные клетки. 1994; 20: 323–330. [PubMed] [Google Scholar] 38. Кобылка П., Ивани П., Брер-Вризендорп Б.С. Сохранение иммунологической и колониеобразующей способности длительно (15 лет) криоконсервированных клеток пуповинной крови.Трансплантация. 1998. 65: 1275–1278. [PubMed] [Google Scholar] 39. Мугишима Х., Харада К., Чин М. и др. Влияние длительного криоконсервации на гематопоэтические клетки-предшественники в пуповинной крови. Пересадка костного мозга. 1999; 23: 395–396. [PubMed] [Google Scholar] 40. Кессинджер А., Шмит-Покорный К., Смит Д., Армитаж Дж. Криоконсервация и инфузия аутологичных стволовых клеток периферической крови. Пересадка костного мозга. 1990; 5 (Дополнение 1): 25–27. [PubMed] [Google Scholar] 41. Зильберштейн Л., Джеффрис Л.Банки плацентарной крови — новый рубеж в медицине переливания крови. N Engl J Med. 1996; 335: 199–201. [PubMed] [Google Scholar] 42. Кавано Ю., Ли К.Л., Ватанабе Т. и др. Криоконсервация мобилизованных стволовых клеток крови при более высокой концентрации клеток без использования запрограммированного морозильника. Ann Hematol. 2004. 83: 50–54. [PubMed] [Google Scholar] 43. Cabezudo E, Dalmases C, Ruz M и др. Компоненты лейкафереза могут быть криоконсервированы при высоких концентрациях клеток без дополнительной потери функции HPC. Переливание.2000; 40: 1223–1227. [PubMed] [Google Scholar] 44. Вильялон Л., Одриозола Дж., Рамос П., Рамос М.Л., Эррера П., де Отейза Дж. П.. Криоконсервация с повышенными клеточными концентрациями клеток-предшественников периферической крови: клинические результаты. Haematologica. 2002; 87: ELT06. [PubMed] [Google Scholar] 45. Глюкман Э. Трансплантация гемопоэтических стволовых клеток с использованием пуповинной крови. N Engl J Med. 2001; 344: 1860–1861. [PubMed] [Google Scholar] 46. Лавлок JE, епископ MW. Предотвращение повреждения живых клеток от замерзания диметилсульфоксидом.Природа. 1959; 183: 1394–1395. [PubMed] [Google Scholar] 47. Эберхардт Р., Цвингерс Т., Хофманн Р. ДМСО у пациентов с активным гонартрозом. Двойное слепое плацебо-контролируемое исследование III фазы. Fortschr Med. 1995. 113: 446–450. [PubMed] [Google Scholar] 48. Албанелл Дж, Базельга Дж. Неотложные состояния системной терапии. Семин Онкол. 2000. 27: 347–361. [PubMed] [Google Scholar] 49. Branch DR, Calderwood S, Cecutti MA, Herst R, Solh H. Гематопоэтические клетки-предшественники устойчивы к токсичности диметилсульфоксида. Переливание.1994; 34: 887–890. [PubMed] [Google Scholar] 50. Zambelli A, Poggi G, Da Prada G и др. Клиническая токсичность инфузии криоконсервированных циркулирующих клеток-предшественников. Anticancer Res. 1998. 18 (6B): 4705–4708. [PubMed] [Google Scholar] 51. Бенекли М., Андерсон Б., Вентлинг Д., Бернштейн С., Чучман М., Маккарти П. Тяжелое угнетение дыхания после инфузии аутологичных стволовых клеток, содержащих диметилсульфоксид, у пациента с амилоидозом AL. Трансплантация костного мозга. 2000; 25: 1299–1301. [PubMed] [Google Scholar] 52.Миньеро Р., Вай С., Джаккино М., Джубеллино С., Мадон Э. Тяжелое угнетение дыхания после инфузии аутологичного костного мозга. Haematologica. 1992; 77: 98–99. [PubMed] [Google Scholar] 53. Hequet O, Dumontet C, El Jaafari-Corbin A, et al. Эпилептические припадки после инфузии аутологичных предшественников периферической крови у пациента, получавшего высокодозную химиотерапию миеломы. Пересадка костного мозга. 2002; 29: 544. [PubMed] [Google Scholar] 54. Хигман, Массачусетс, Порт-Джеймс, Бошамп, штат Нью-Джерси, младший, Чен, АР. Обратимая лейкоэнцефалопатия, связанная с повторной инфузией стволовых клеток, сохраненных ДМСО.Пересадка костного мозга. 2000; 26: 797–800. [PubMed] [Google Scholar] 55. Ферруччи П.Ф., Мартинони А., Кокороччио Э. и др. Оценка острой токсичности, связанной с реинфузией аутологичных клеток-предшественников периферической крови у пациентов, проходящих химиотерапию в высоких дозах. Пересадка костного мозга. 2000. 25: 173–177. [PubMed] [Google Scholar] 56. Бургер Дж, Гилмор MJ, Джексон Б., Прентис Х.Г. Острая гемоглобинемия, связанная с реинфузией лейкоцитов костного мозга для аутотрансплантации костного мозга.Пересадка костного мозга. 1991; 7: 322–324. [PubMed] [Google Scholar] 57. Зенхаузерн Р., Тоблер А., Леонсини Л., Гесс О. М., Феррари П. Смертельная сердечная аритмия после инфузии криоконсервированных диметилсульфоксида гемопоэтических стволовых клеток у пациента с тяжелым первичным сердечным амилоидозом и терминальной почечной недостаточностью. Ann Hematol. 2000. 79: 523–526. [PubMed] [Google Scholar] 58. Windrum P, Morris TC, Drake MB, Niederwieser D, Ruutu T. Различия в использовании диментилсульфоксида при трансплантации стволовых клеток: обзор центров EBMT.Пересадка костного мозга. 2005; 36: 601–603. [PubMed] [Google Scholar] 59. Сайм Р., Бьюик М., Стюарт Д., Портер К., Чаддертон Т., Глюк С. Роль истощения диметилсульфоксида перед аутотрансплантацией: гематологическое восстановление, побочные эффекты и токсичность. Пересадка костного мозга Biol. 2004. 10: 135–141. [PubMed] [Google Scholar] 60. Баккен А.М., Брюзруд О., Абрахамсен Дж. Ф. Нет различий в образовании колоний стволовых клеток периферической крови, замороженных 5% или 10% диметилсульфоксидом. J Hematother Stem Cell Res. 2003. 12: 351–358.[PubMed] [Google Scholar] 61. Саснор Л.М., Кале В.П., Лимай Л.С. Добавление в обычную замораживающую среду комбинации каталазы и трегалозы приводит к лучшей защите поверхностных молекул и функциональности гемопоэтических клеток. J Hematother Stem Cell Res. 2003. 12: 553–564. [PubMed] [Google Scholar] 62. Stroh C, Cassens U, Samraj AK, Sibrowski W, Schulze-Osthoff K, Los M. Роль каспаз в крио-травмах: ингибирование каспаз сильно улучшает восстановление криоконсервированных гематопоэтических и других клеток.FASEB J. 2002; 16: 1651–1653. [PubMed] [Google Scholar] 63. Роллиг С., Бабац Дж., Вагнер И. и др. Размораживание криоконсервированной мобилизованной периферической крови — сравнение между водяной баней и устройством для сухого нагревания. Цитотерапия. 2002; 4: 551–555. [PubMed] [Google Scholar] 64. Морофф Г., Ситхараман С., Курц Дж. В. и др. Сохранение клеточных свойств PBPC после хранения в жидкости и криоконсервации. Переливание. 2004. 44: 245–252. [PubMed] [Google Scholar] 65. Calmels B, Houze P, Hengesse JC, Ducrot T, Malenfant C, Chabannon C.Доклиническая оценка автоматического закрытого устройства для управления жидкостью: Cytomate, для вымывания ДМСО из трансплантатов гемопоэтических стволовых клеток после размораживания. Пересадка костного мозга. 2003. 31: 823–828. [PubMed] [Google Scholar] 66. Шлебак А.А., Марли С.Б., Робертс И.А., Дэвидсон Р.Дж., Голдман Дж.М., Гордон М.Ю. Оптимальные сроки обработки и криоконсервации гемопоэтических стволовых клеток пуповины для клинической трансплантации. Пересадка костного мозга. 1999. 23: 131–136. [PubMed] [Google Scholar] 67. Курцберг Дж., Лафлин М., Грэм М.Л. и др.Плацентарная кровь как источник гемопоэтических стволовых клеток для трансплантации неродственным реципиентам. N Engl J Med. 1996. 335: 157–166. [PubMed] [Google Scholar] 68. Нагумура-Иноуэ Т., Шиоя М., Суго М. и др. Вымывание ДМСО не улучшает скорость приживления трансплантата пуповинной крови: наблюдение за 46 взрослыми пациентами с установками, отправленными из единого банка пуповинной крови. Переливание. 2003. 43: 1285–1295. [PubMed] [Google Scholar] 69. Божан Ф., Хартманн О, Кюнц М., Ле Форестье С., Дивайн М, Дуэдари Н.Простая и эффективная процедура промывки криоконсервированных гемопоэтических стволовых клеток человека перед реинфузией. Пересадка костного мозга. 1991; 8: 291–294. [PubMed] [Google Scholar] 70. Zingsem J, Strasser E, Weisbach V, et al. Обработка пуповинной крови с автоматизированной и функционально закрытой системой. Переливание. 2003. 43: 806–813. [PubMed] [Google Scholar] 71. Айелло Дж., Хесдорфер С., Рейсс РФ. Полуавтоматический метод уменьшения объема суспензии стволовых клеток для аутотрансплантации. J Hematother. 1995; 4: 545–549.[PubMed] [Google Scholar] 72. Родригес Л., Азкета С., Аззалин С., Гарсия Дж., Керол С. Промывание трансплантатов пуповинной крови после оттаивания: высокое восстановление клеток с использованием автоматизированной и закрытой системы. Vox Sang. 2004. 87: 165–172. [PubMed] [Google Scholar] 73. Родригес Л., Веласко Б., Гарсия Дж., Мартин-Энао, Джорджия. Оценка автоматического устройства обработки клеток для восстановления диметилсульфоксида из кроветворных трансплантатов после оттаивания. Переливание. 2005; 45: 1391–1397. [PubMed] [Google Scholar] 74. Мерика П., Шустр П., Винс М. и др.Контейнеры для замораживания и хранения стволовых клеток костного мозга. Sb Ved Pr Lek Fak Karlovy University Hradci Kralove. 1991. 34 (4): 367–387. [PubMed] [Google Scholar] 75. Ян Х, Акер Дж. П., Кабухат М., Летчер Б., Ларратт Л., МакГанн Л. Э. Ассоциация жизнеспособных клеток CD34 + и CFU-GM после оттаивания со временем до приживления кроветворения. Пересадка костного мозга. 2005; 35: 881–887. [PubMed] [Google Scholar] 76. Хьюбел А., Карлквист Д., Клей М., Маккаллоу Дж. Хранение жидкости, транспортировка и криоконсервация пуповинной крови. Переливание.2004; 44: 518–525. [PubMed] [Google Scholar] 77. FDA. Текущая надлежащая практика производства тканей для производителей продуктов на основе клеточных тканей человека. Инспекция и исполнение; Предлагаемое правило. 2001. Доступно по адресу www.access.gpo.gov/su_docs/aces140.html. 78. Джестис Х.К., Фаррингтон М, Хант С., Мэтьюз I, Скотт М.А., Форман Дж., Маркус Р.Э. Бактериальное заражение клеток-предшественников периферической крови для трансплантации. Transfus Med. 1996. 6: 103–110. [PubMed] [Google Scholar] 79. Падли Д., Кунц Ф., Тригг М.Э., Гингрич Р., Штраус Р.Г.Уровни бактериального загрязнения после обработки препаратов клеток-предшественников костного мозга и периферической крови. Переливание. 1996; 36: 53–56. [PubMed] [Google Scholar] 80. Espinosa MT, Fox R, Creger RJ, Lazarus HM. Микробиологическое загрязнение клеток-предшественников периферической крови, собранных для трансплантации гемопоэтических клеток. Переливание. 1996; 36: 789–793. [PubMed] [Google Scholar] 81. Уэбб И.Дж., Корал Ф.С., Андерсен Дж. В. и др. Источники и последствия бактериального заражения компонентов гемопоэтических стволовых клеток: последствия для безопасности гематотерапии и инженерии трансплантата.Переливание. 1996; 36: 782–788. [PubMed] [Google Scholar] 82. Швелла Н., Циммерманн Р., Хойфт Х. Г. и др. Микробиологическая контаминация аутотрансплантатов стволовых клеток периферической крови. Vox Sang. 1994. 67: 32–35. [PubMed] [Google Scholar] 83. Принц Х.М., Пейдж С.Р., Китинг А. и др. Микробное заражение костного мозга и периферической крови. Пересадка костного мозга. 1995; 15: 87–91. [PubMed] [Google Scholar] 84. Аттариан Х, Бенсингер В.И., Бакнер С.Д., Макдональд Д.Л., Роули С.Д. Микробное заражение коллекций PBSC.Пересадка костного мозга. 1996; 17: 699–702. [PubMed] [Google Scholar] 85. Кипп Ф., Линнеманн Э., Фишер Р.Дж., Сибровски В., Кассенс У. Криоконсервация снижает концентрацию обнаруживаемых бактерий в загрязненных продуктах клеток-предшественников периферической крови. Переливание. 2004. 44: 1098–1103. [PubMed] [Google Scholar] 86. Брехер М.Э., Средство N, Джере С.С., Хит Д., Ротенберг С., Штутцман Л.С. Оценка автоматизированной системы культивирования для обнаружения бактериального заражения тромбоцитов: анализ с 15 контаминирующими организмами.Переливание. 2001; 41: 477–482. [PubMed] [Google Scholar] 87. Шафер Т.В., Эверетт Дж., Сильвер Г.Х., Кэмерон П.Е. Биологическая опасность: жидкий азот, зараженный вирусами, научное письмо. Наука. 1976; 191: 25–26. № 4222. [PubMed] [Google Scholar] 88. Теддер Р.С., Цукерман М.А., Голдстоун А.Х. и др. Передача гепатита B из зараженного резервуара для криоконсервации. Ланцет. 1995; 346: 137–140. [PubMed] [Google Scholar] 89. Хокинс А.Е., Цукерман М.А., Бриггс М. и др. Анализ нуклеотидной последовательности гепатита B: связь вспышки острого гепатита B с загрязнением резервуара для криоконсервации.J Virol Methods. 1996. 60: 81–88. [PubMed] [Google Scholar] 90. Фонтан Д., Ралстон М., Хиггинс Н. и др. Морозильники с жидким азотом: потенциальный источник микробного загрязнения компонентов гемопоэтических стволовых клеток. Переливание. 1997. 37: 585–591. [PubMed] [Google Scholar] 91. Хусебекк А., Скауг К., Костад А., Даль И.М., Гуттеберг Т., Скоген Б. Сбор инфицированных вирусом гепатита В клеток-предшественников периферической крови в морозильной камере с жидким азотом, содержащей неинфекционные продукты. Переливание. 2004; 44: 942–943. [PubMed] [Google Scholar] 92.Воак Д., Канн Р., Финни Р. Д. и др. Рекомендации по применению продуктов крови: Переливание младенцев и новорожденных. Британский комитет стандартов в области гематологии Целевая группа по переливанию крови Transfus Med. 1994; 4: 63–69. [PubMed] [Google Scholar] 93. Посуда CB, Нельсон AM, Блау CA. Замораживание с контролируемой скоростью человеческих ES-клеток. Биотехники. 2005; 38: 879–880. 882–883. [PubMed] [Google Scholar] 94. Хэ Дж, Лю Дж.Х., Цзян К., Чжу FM, Ян LX. Оценка эффекта кратковременной криоконсервации кроветворных клеток пуповинной крови.Чжунго Ши Ян Сюэ йе Сюэ за Чжи. 2004. 12: 375–377. [PubMed] [Google Scholar] 95. Уре Дж. М., Фиринг С., Смит АГ. Быстрый и эффективный метод замораживания и восстановления клонов эмбриональных стволовых клеток. Тенденции Genet. 1992; 8: 6. [PubMed] [Google Scholar] 96. Адамс Р.М., Ван М., Крейн А.М., Браун Б., Дарлингтон Дж. Дж., Ледли Ф. Д. Эффективная криоконсервация и длительное хранение первичных гепатоцитов человека с восстановлением жизнеспособности, дифференцировки и репликативного потенциала. Трансплантация клеток. 1995; 4: 579–586. [PubMed] [Google Scholar] 97.Милошевич Дж., Сторч А., Шварц Дж. Криоконсервация не влияет на пролиферацию и мультипотентность нервных клеток-предшественников мыши. Стволовые клетки. 2005. 23: 681–688. [PubMed] [Google Scholar] 98. Dobrinksy JR. Клеточный подход к криоконсервации эмбрионов. Териогенология. 1996; 45: 17–26. [Google Scholar] 99. Рубинов Б.Е., Пера М.Ф., Вайта Г., Трунсон А.О. Эффективная криоконсервация эмбриональных стволовых клеток человека методом открытой витрификации с вытянутой соломинкой. Hum Reprod. 2001; 16: 2187–2194. [PubMed] [Google Scholar] 100.Fujioka T, Yasuchika K, Nakamura Y, Nakatsuji N, Suemori H. Простой и эффективный метод криоконсервации эмбриональных стволовых клеток приматов. Int J Dev Biol. 2004. 48: 1149–1154. [PubMed] [Google Scholar] 101. Zhou CQ, Mai QY, Li T, Zhuang GL. Криоконсервация эмбриональных стволовых клеток человека путем витрификации. Чин Мед Ж. (англ.) 2004; 117: 1050–1055. [PubMed] [Google Scholar] 102. Персегин П., Эпис Р., Вигано М., Малакрида А., Пасторини А., Камероне Г. Удовлетворительное восстановление и жизнеспособность криоконсервированных стволовых клеток при высокой концентрации клеток.Transfus Sci. 1997; 18: 399–403. [PubMed] [Google Scholar] 103. Лю К., Гао З, Цзян И, Донг В. и др. Сбор, обработка и криоконсервация гемопоэтических стволовых клеток плацентарной пуповинной крови. Пекин Да Сюэ Бао. 2003. 35: 119–122. [PubMed] [Google Scholar] 104. Баркер JN, Вагнер JE. Трансплантация пуповинной крови для лечения рака. Нат Рев Рак. 2003; 3: 526–532. [PubMed] [Google Scholar] 105. Донненберг А.Д., Кох Е.К., Гриффин Д.Л. и др. Жизнеспособность криоконсервированных клеток-предшественников КМ хранится более десяти лет.Цитотерапия. 2002. 4: 157–163. [PubMed] [Google Scholar] 106. Николс Дж., Зевник Б., Анастассиадис К. и др. Формирование плюрипотентных стволовых клеток в эмбрионе млекопитающих зависит от фактора транскрипции POU Oct4. Клетка. 1998. 95: 379–391. [PubMed] [Google Scholar] 107. Инь А.Х., Миралья С., Занджани Э.Д. и др. AC133, новый маркер гемопоэтических стволовых клеток и клеток-предшественников. Кровь. 1997; 90: 5002–5012. [PubMed] [Google Scholar]Нигерия Подробнее | Законы о борьбе против табакаУказ о борьбе с курением табака (No.20) 1990Постановление о борьбе с курением табака (№ 20) 1990 г.Закон о борьбе с курением табака (1990 № 20)Закон о борьбе с курением табака (1990 № 20)Закон о запрещении рекламы сигарет и других табачных изделий (2002 г., No.4)Закон о запрещении рекламы сигарет и других табачных изделий (2002, № 4)Промышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2008, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2008, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2014, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2014, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретНациональный закон о борьбе против табака, 2015 г.Национальный закон о борьбе против табака, 2015 г.Промышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2018, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 463: 2018, Стандарт на табак и табачные изделия — Спецификации для сигаретПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 1031: 2018, Стандарт на табак и табачные изделия — бездымные табачные изделияПромышленный стандарт Нигерии (NIS) 1031: 2018, Стандарт на табак и табачные изделия — бездымные табачные изделияНациональные правила борьбы против табака, 2019 г.Национальные правила борьбы против табака, 2019 г.Насколько нам известно, все представленные здесь законы действуют с 26 июля 2021 года, если не указано иное. Эмоциональный интеллект, эмоциональный труд и удовлетворенность работой врачей в Греции | BMC Health Services ResearchHaas JS, Cook EF, Puopolo AL, Burstin HR, Cleary PD, Brennan TA: Связано ли профессиональное удовлетворение терапевтов общего профиля с удовлетворенностью пациентов? J Gen Intern Med. 2000, 15: 122-128. 10.1046 / j.1525-1497.2000.02219.x. CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый Линн Л.С., Брук Р.Х., Кларк В.А., Дэвис А.Р., Финк А., Косекофф Дж .: Удовлетворенность врача и пациента как факторы, связанные с организацией групповых практик внутренней медицины. Med Care. 1985, 23: 1171-1178. 10.1097 / 00005650-198510000-00006. CAS Статья PubMed Google ученый De Voe J, Fryer GE, Straub A, McCann J, Fairbrother G: Соответствующее удовлетворение: существует ли географическая корреляция между удовлетворенностью пациента и врача?Med Care. 2007, 45: 88-94. 10.1097 / 01.mlr.0000241048.85215.8b. Артикул Google ученый DiMatteo MR, Sherbourne CD, Hays RD, Ordway L, Kravitz RL, McGlynn EA, Kaplan S, Rogers WH: Характеристики врачей влияют на приверженность пациентов лечению: результаты исследования Medical Outcomes Study. Health Psychol. 1993, 12: 93-102. CAS Статья PubMed Google ученый Barsade SG, Gibson DE: Почему влияние имеет значение в организациях ?. Академия перспектив управления. 2007, 21: 36-59. Артикул Google ученый Саловей П., Майер Дж. Д.: Эмоциональный интеллект. Воображение, познание и личность. 1990, 9: 185-211. Артикул Google ученый Mayer JD, Salovey P: Что такое эмоциональный интеллект ?. Эмоциональное развитие и эмоциональный интеллект: значение для педагогов.Отредактировано: Salovey P, Sluyter D. 1997, New York: Basic Books, 3–31. Google ученый Петридес К.В., Фернхэм А: Черта эмоционального интеллекта: Психометрическое исследование со ссылкой на установленные таксономии черт. Eur J Pers. 2001, 15: 425-448. 10.1002 / пер.416. Артикул Google ученый Петридес К.В.: Способности и черты эмоционального интеллекта.Справочник Вили-Блэквелла по индивидуальным различиям. Отредактировано: Chamorro-Premuzic T, Stumm S, Furnham A. 2011, UK: Blackwell Publishing, 655-678. 1 Google ученый Перес Дж. К., Петридес К. В., Фернхам А: Измерение черт эмоционального интеллекта. Международный справочник эмоционального интеллекта. Отредактировано: Schulze R, Roberts RD. 2005, Кембридж, Массачусетс: Hogrefe & Huber, 123-140. Google ученый Law KS, Wong CS, Song LJ: конструкция и критерий достоверности эмоционального интеллекта и его потенциальная полезность для исследований в области управления. J Appl Psychol. 2004, 89: 483-496. Артикул PubMed Google ученый Ван Рой Д.Л., Висвесваран C: Эмоциональный интеллект: метааналитическое исследование прогностической достоверности и номологической сети. J Vocat Behav. 2004, 65: 71-95. 10.1016 / S0001-8791 (03) 00076-9. Артикул Google ученый Kafetsios K, Zampetakis LA: Эмоциональный интеллект и удовлетворенность работой: проверка опосредующей роли положительных и отрицательных эмоций на работе. Pers Ind Diff. 2008, 44: 710-720. Артикул Google ученый Sy T, Tram S, O’Hara LA: Связь эмоционального интеллекта сотрудников и менеджеров с удовлетворенностью работой и производительностью. J Vocat Behav. 2006, 68: 461-473. 10.1016 / j.jvb.2005.10.003. Артикул Google ученый Goleman D: Теория производительности, основанная на ЭИ. Эмоционально интеллектуальное рабочее место. Как выбрать, измерить и улучшить эмоциональный интеллект у отдельных лиц, групп и организаций. Отредактировано: Cherniss C, Goleman D. 2001, Сан-Франциско, Калифорния: Jossey-Bass, 27-44. Google ученый Фридман HS, Ди Маттео MR: Межличностные проблемы в здравоохранении. 1982, Нью-Йорк: Academic Press Google ученый Локк Э.А.: Природа и причины удовлетворенности работой. Справочник по производственной и организационной психологии. Отредактировал: Dunnette MD. 1976, США: Рэнд МакНалли, 1297-1349. Google ученый Бар-Он Р: Реестр эмоциональных факторов Бар-Он (EQ-i): Обоснование, описание и краткое изложение психометрических свойств. Измерение эмоционального интеллекта: точки соприкосновения и противоречия. Под редакцией: Гехер Г. 2004, Хауппог, Нью-Йорк: Nova Science Publishers, 111–142. Google ученый Кармели A: Взаимосвязь между эмоциональным интеллектом и отношением к работе, поведением и результатами. J Manag Psychol. 2003, 18: 788-813. Артикул Google ученый Прати Л.М., Дуглас К., Феррис Г.Р., Амперметр А.П., Бакли М.Р.: Эмоциональный интеллект, эффективность лидерства и командные результаты. Int J Орган Анал. 2003, 11: 21-41.10.1108 / eb028961. Артикул Google ученый Вен Х. К., Хунг С. М., Лю Ю. Т., Ченг Й. Дж., Йен Ц. Ю., Чанг С. К., Хуанг С. К.: Связь между эмоциональным интеллектом и выгоранием врача, удовлетворенностью работой и удовлетворенностью пациентов. Med Educ. 2011, 45: 835-842. 10.1111 / j.1365-2923.2011.03985.x. Артикул PubMed Google ученый Петридес К.В., Фернхэм А: Роль черты эмоционального интеллекта в гендерно-специфической модели организационных переменных.J Appl Soc Psychol. 2006, 36: 552-569. 10.1111 / j.0021-9029.2006.00019.x. Артикул Google ученый Салим С.С., Насир Р., Арип М., Мустафа М.: Роль эмоционального интеллекта в удовлетворенности работой школьных учителей. Общественные науки. 2012, 7: 125-129. Артикул Google ученый Афолаби О.А., Авосола Р.К., Омоле С.О .: Влияние эмоционального интеллекта и пола на эффективность работы и удовлетворенность работой среди нигерийских полицейских.Curr Res J Soc Sci. 2010, 2: 147-154. Google ученый Моррис Дж. А., Фельдман, округ Колумбия: размеры, предшественники и последствия эмоционального труда. Acad Manage J. 1996, 21: 986-1010. Google ученый Гранди A: Регулирование эмоций на рабочем месте: новый способ осмысления эмоционального труда. J Occup Health Psychol. 2000, 5: 95-110. CAS Статья PubMed Google ученый Персо Р: Драма о том, как стать врачом. Postgrad Med J. 2005, 81: 276-277. 10.1136 / pgmj.2004.023796. CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый Ларсон Э.Б., Яо X: Клиническая эмпатия как эмоциональный труд в отношениях пациента и врача. ДЖАМА. 2005, 293: 1100-1106. 10.1001 / jama.293.9.1100. CAS Статья PubMed Google ученый Grandey A: Когда «шоу должно продолжаться»: поверхностное действие и глубокое действие как детерминанты эмоционального истощения и предоставления услуг по оценке сверстников. Acad Manage J. 2003, 46: 86-96. 10.2307 / 30040678. Артикул Google ученый Хохшильд A: Управляемое сердце: коммерциализация человеческих чувств. 1983, Беркли: Калифорнийский университет Press Google ученый Brotheridge CM, Grandey AA: Эмоциональный труд и выгорание: сравнение двух точек зрения на «работу людей». J Vocat Behav. 2002, 60: 17-39. 10.1006 / jvbe.2001.1815. Артикул Google ученый Pugliesi K: Последствия эмоционального труда: влияние на рабочий стресс, удовлетворенность работой и благополучие. Мотив Эмот. 1999, 23: 125-154. 10.1023 / А: 102132 79. Артикул Google ученый Schaubroeck J, Jones JR: Предшественники измерений эмоционального труда на рабочем месте и модераторы их воздействия на физические симптомы. J Organ Behav. 2000, 21: 163-183. 10.1002 / (SICI) 1099-1379 (200003) 21: 2 <163 :: AID-JOB37> 3.0.CO; 2-L. Артикул Google ученый Авраам Р: Эмоциональный диссонанс в организациях: предпосылки, последствия и модераторы. Genet Soc Gen Psychol Monogr. 1998, 124: 229-246. CAS PubMed Google ученый Rupp DE, McCance AS, Spencer S, Sonntag K: Потребитель (не) справедливость и эмоциональный труд: роль восприятия перспективы, гнева и эмоционального регулирования. J Manag. 2008, 34: 903-924. Google ученый Крумл С., Геддес Д: Возгорание без выгорания: есть ли идеальный способ выполнения эмоциональной работы ?. Эмоции на рабочем месте: исследования, теория и практика. Под редакцией: Ашканасы Н.М., Haertel CEJ, Zerbe WJ. 2000, Вестпорт, Коннектикут: Quorum Books, 177–188. Google ученый Ричардс Дж. М., Гросс Дж. Дж.: Регулирование эмоций и память: когнитивные издержки сохранения хладнокровия. J Pers Soc Psychol. 2000, 79: 410-424. CAS Статья PubMed Google ученый Боно Дж. Э., Вей М. А.: К пониманию эмоционального управления на работе: количественный обзор исследований эмоционального труда. Эмоции в организационном поведении.Под редакцией: Haertel CEJ, Zerbe WJ, Ashkanasy NM. 2005, Махва, Нью-Джерси: Эрлбаум, 213-233. Google ученый Johnson HM, Spector PE: Служение с улыбкой: Смягчают ли эмоциональный интеллект, пол и автономия эмоциональный трудовой процесс? J Occup Health Psychol. 2007, 12: 319-333. Артикул PubMed Google ученый Mikolajczak M, Menil C, Luminet O: Объяснение защитного эффекта черты эмоционального интеллекта в отношении профессионального стресса: Исследование эмоциональных процессов труда.J Res Personal. 2007, 41: 1107-1117. 10.1016 / j.jrp.2007.01.003. Артикул Google ученый Ли Дж. Ок. C: Снижение выгорания и повышение удовлетворенности работой: критическая роль эмоционального интеллекта и эмоционального труда сотрудников отеля. Int J Hosp Manag. 2012, 31: 1101-1112. 10.1016 / j.ijhm.2012.01.007. Артикул Google ученый Остин Э.Дж., Дор TCP, О’Донован К.М.: Связь личности и эмоционального интеллекта с восприятием правил отображения и эмоциональным трудом.Pers Ind Differ. 2008, 44: 679-688. 10.1016 / j.paid.2007.10.001. Артикул Google ученый Brotheridge CM: Роль эмоционального интеллекта и других переменных индивидуальных различий в прогнозировании эмоционального труда относительно ситуативных требований. Псикотема. 2006, 18: 139-144. PubMed Google ученый Wong CS, Law KS: Влияние эмоционального интеллекта лидера и последователя на производительность и отношение: исследовательское исследование.Лидерш К. 2002, 13: 243-274. 10.1016 / S1048-9843 (02) 00099-1. Артикул Google ученый Брейфилд А.Х., Роте Х.Ф .: Индекс удовлетворенности работой. J Appl Psychol. 1951, 35: 307-311. Артикул Google ученый Briët M, Näring G, Brouwers A, van Droffelaar A: Эмоциональный труд: ontwikkeling en validering Анкета Ван де Голландии по эмоциональному труду (D-QEL).Gedrag en Gezondheid. 2005, 33: 318-330. Google ученый Podsakoff PM, MacKenzie SB, Lee JY, Podsakoff NP: Общие систематические ошибки в поведенческих исследованиях: критический обзор литературы и рекомендуемые средства правовой защиты. J Appl Psychol. 2003, 88: 879-903. Артикул PubMed Google ученый Форнелл С., Ларкер Д.Ф .: Оценка моделей структурных уравнений с ненаблюдаемыми переменными и ошибкой измерения.J Mark Res. 1981, 18: 39-50. 10.2307 / 3151312. Артикул Google ученый Волос Дж. Ф., Блэк Б., Бабин Б., Андерсон Р. Э., Татхэм Р. Л.: Многомерный анализ данных: глобальная перспектива. 2010, Нью-Джерси: Pearson Education Google ученый Проповедник К.Дж., Рукер Д.Д., Хейс А.Ф .: Рассмотрение гипотез модерируемого посредничества: теория, методы и рецепты. Multivar Behav Res.2007, 42: 185-227. 10.1080 / 00273170701341316. Артикул Google ученый Фрейзер П.А., Тикс А.П., Баррон К.Э .: Тестирование эффектов модератора и посредника в исследованиях психологии консультирования. J Couns Psychol. 2004, 51: 115-134. Артикул Google ученый Shrout PE, Bolger N: Посредничество в экспериментальных и неэкспериментальных исследованиях: новые процедуры и рекомендации.Психологические методы. 2002, 7: 422-445. Артикул PubMed Google ученый Маккиннон Д.П., Локвуд К.М., Уильямс Дж .: Пределы достоверности косвенного эффекта: распределение продукта и методы повторной выборки. Multivar Behav Res. 2004, 39: 99-128. 10.1207 / s15327906mbr3901_4. Артикул Google ученый Hayes AF: PROCESS: универсальный вычислительный инструмент для посредничества наблюдаемых переменных, модерации и моделирования условных процессов.2012 г., http://www.afhayes.com/public/process2012.pdf. Google ученый О’Брайен Р.М.: Предупреждение относительно практических правил для факторов инфляции дисперсии. Qual Quant. 2007, 41: 673-690. 10.1007 / s11135-006-9018-6. Артикул Google ученый Ху Л., Бентлер П.М.: Критерии отсечения для индексов соответствия в анализе ковариационной структуры: традиционные критерии в сравнении с новыми альтернативами.Struct Equ Model. 1999, 6: 1-55. 10.1080 / 10705519 0118. Артикул Google ученый Brown TA: Подтверждающий факторный анализ для прикладных исследований. 2006, Нью-Йорк: Guilford Press Google ученый Scheurer D, McKean S, Miller J, Wetterneck T: Удовлетворенность врачом США: систематический обзор. J Hosp Med. 2009, 4: 560-568. 10.1002 / jhm.496. Артикул PubMed Google ученый Абрахам Р: Эмоциональный диссонанс в организациях: концептуализация роли самооценки и напряжения, вызванного работой. Лидер OrganDev J. 1999, 20: 18-25. 10.1108 / 01437739 | 1152.
Тип клавиатуры | Мехамембрана |
Доступный тип переключателя | Мехамембрана |
Подсветка | Razer Chroma ™ настраиваемая подсветка с 16.8 миллионов вариантов цвета |
Ключ опрокидывающийся | Есть |
Защита от привидений | Есть |
Игровой режим | Есть |
Полностью программируемые клавиши | Есть |
Синапс | Synapse 3 |
Запись макроса на лету | Есть |
Ультраполлинг, 1000 Гц | Есть |
Дополнительные игровые ключи | № |
Сквозной аудиоразъем | № |
Выделенные средства управления мультимедиа | Есть |
Сквозной порт USB | № |
Упор для запястий | Есть |
Тип кабеля | Несъемный оптоволоконный кабель в оплетке |
Прибл.Размеры |
|
Прибл. Размеры (с упором для запястий) |
|
Прибл. Вес | 2 фунта / 915 г |
Прибл.Вес (с упором для запястий) | 2,7 фунта / 1215 г |
[Обзор] Клавиатура Yamaha PSR E463 ✅ Мой опыт за 19 дней
Обзор Yamaha PSR-E463: E463 — бюджетная флагманская клавиатура серии E с отличным соотношением цены и качества от Yamaha и в этой последней модели (2018) Yamaha обновил его множеством свежих новых стилей, унаследованных от серии Yamaha PSR-S.
Вы получаете действительно фантастическое соотношение цены и качества, и в этом крошечном маленьком пакете, портативном пианино, работающем от батареек, стоимостью примерно 240 долларов США, вы получаете действительно хорошие звуки акустических инструментов, звуки фортепиано, звуки электрического пианино, звуки синтезатора и пэда. действительно хорошая цена, приемлемая для бюджетного музыканта.
Однако, будем откровенны, это клавиатура аранжировщика, и она не подходит для всех сценариев и для всех музыкантов.
Проверьте эти другие клавиатуры от Yamaha PSR Series :
В зависимости от того, что вы пытаетесь сделать со своей музыкой, эта клавиатура может или не может быть наиболее подходящей для вас, и в этой статье я рассмотрю различные сценарии, для которых вы будете использовать клавиатуру, и подойдет ли эта клавиатура вам или нет.
«Щелкните здесь, чтобы увидеть отзывы владельцев Yamaha PSR E463 на Amazon»
Сравнение Yamaha PSR E463 с другими наиболее продаваемыми цифровыми пианино Yamaha
Клавиатура аранжировщика Разнообразие тембров и тембров Регуляторы Live Control Мощные динамики Режим DJ Pattern Easy Connectivity Доступная цена 85% положительная обратная связь | 9000 Best Model |
| 9350006 | Лучшее S eller Бюджетный Authentic Feel Молотковые клавиши с утяжелением Минималистичный дизайн AWM Sound Engine 88% положительных отзывов на Amazon | ||||||||||
| Лучший класс | Для начинающих Сенсорные клавиши 574 Инструменты и голоса 165 Стили Связь с приложением Множество обучающих функций Легкий 9196 913 913 9000
Если вы используете Yamaha PSR-E463, в основном в качестве пианино, пытающееся сыграть на этой клавиатуре классические произведения Моцарта, Бетховена, Скотти, оно вам не подойдет. Если вам нужен звук пианино действительно хорошего качества, это вам не подходит, потому что на настоящем пианино вам понадобится 88 клавиш. Если вы пытаетесь играть классические пьесы, аранжировка на клавиатуре будет сильно отличаться от звучания на настоящем пианино. Если вы пытаетесь научиться этому на цифровом пианино, потому что вы не хотите беспокоить своих соседей, вы хотите иметь возможность использовать наушники, вы хотите убедиться, что вы проверяете другие виды клавиатур с взвешенными клавишами. Я говорю, что это потому, что на настоящем пианино клавиши на левой стороне клавиатуры будут бить по более толстым струнам, а молоточки будут тяжелее, вы должны быть уверены, что не только у вас есть утяжеленные клавиши, а желательно имеют градуированные молоточковые клавиши, где клавиша на левой стороне клавиатуры тяжелее и будет постепенно светлее по мере того, как вы перемещаетесь к правой стороне клавиатуры. На акустическом пианино, такие вещи, как резонанс струн, резонанс демпфера, со всеми эффектами, вы играете с чувствительностью к силе нажатия на настоящем акустическом пианино, а также с полным диапазоном вращения педалей от 3 педалей настоящего пианино. Все это будет недоступно на PS R-E463. Подходит ли E463 для обученияЕсли вы ищете что-то, на чем можно было бы изучить настоящее фортепиано, я предлагаю вам взглянуть на цифровое пианино, а не на клавиатуру аранжировщика. Casio PRIVIA PX-серия, а для более экономных также будет P-125 от Yamaha, или, если у вас есть немного больше денег, чтобы потратить, и вы хотите в портативной упаковке, у вас есть Yamaha P-515 в качестве ну, а на настоящем пианино клавиатура на самом деле сделана из настоящего дерева. Клавиши имеют определенную пористость, чтобы ваши пальцы не скользили по клавишам, когда вы немного вспотеете во время игры. Однако, если у вас действительно большие бюджетные ограничения, я бы посоветовал, если звук фортепиано является для вас главным приоритетом, вы можете просто проверить PSR-EW410. Что делать, если вам нравятся все элементы аранжировочной клавиатуры, но вы все еще хотите ступенчатый молоточковый механизм, вы можете действительно взглянуть на Yamaha DJX-660, у которого есть стили клавиатуры аранжировщика, множество звуков, а также 88 клавиш. Но он будет менее портативным, но если у вас есть место дома, и вы хотите быть уверенным, что изучаете правильную технику игры на настоящем пианино, даже очень дешевое пианино стоимостью от трех до четырехсот долларов даст вам лучшее тактильное ощущение. чувствительность к силе нажатия, чем у такой аранжировочной клавиатуры. Могу ли я использовать его в среде рабочей станции?Если вы пытаетесь использовать эту клавиатуру в сценарии DAW, DAW означает среду рабочей станции цифрового действия, эта клавиатура не будет наиболее подходящей для вас. Если вы пытаетесь управлять программным обеспечением, таким как Ableton, вы обнаружите, что эта клавиатура не подходит для управления через MIDI. Это нормально, если вы пытаетесь использовать программное обеспечение для управления этой клавиатурой, но если вы пытаетесь использовать эту клавиатуру для управления программным обеспечением, вы должны убедиться, что вместо этого вы получаете MIDI-контроллер по той же цене, по которой вы покупаете его. клавиатура для. Вы действительно можете получить MIDI-контроллер с функцией After Touch, которого нет в этой клавиатуре в этом ценовом диапазоне. Вы также хотите убедиться, что у вас есть MIDI-контроллер, который может отправлять такие вещи, как изменения патчей, который может указывать различные MIDI-каналы, различные ползунки и регуляторы, чтобы вы могли изменять, создавать и воспроизводить музыку в вашем Настройка DAW. Могу ли я использовать его как синтезатор?Теперь мы поговорим о создании звука, синтезе звука, не заблуждайтесь, это клавиатура, но вы не можете назвать ее синтезатором. Вы можете изменять голоса, используя такие эффекты, как хорус, фленджер, реверберация. Это все еще довольно простые эффекты, которые можно использовать для изменения. Однако, если вы хотите создать свежий, новый, уникальный, персонализированный звук с нуля, вы хотите убедиться, что вы смотрите на синтезатор, то, что вы можете использовать для создания совершенно новых звуков с использованием различных фильтров и эффектов формы волны. и это то, на что Yamaha PSR-E463 не может. И если вы ищете звуки старых винтажных синтезаторов, вы можете найти их в цифровой версии программного обеспечения, но не по очень дорогой цене, в наши дни вы можете использовать их как часть вашей DAW-установки. Yamaha PSR-E463 поставляется с шеститрековым секвенсором. Для новичка этого может быть достаточно, но вы обнаружите, что это ограничивает, если вы пытаетесь использовать секвенсор для создания законченной безупречной песни. В наши дни, когда компьютеры настолько мощные и по такой доступной цене, вы действительно можете использовать компьютер в качестве секвенсора, который намного более подходит, потому что у него огромный экран, который находится на вашем мониторе или на вашем ноутбуке, его легче работать с визуальной средой, и вы не ограничены только шестью треками, у вас есть столько треков, сколько ресурс на вашем компьютере может дать вам. Итак, если у вас намного больше ОЗУ, у вас есть отличный процессор, который может обрабатывать все разные звуки одновременно. Вам лучше использовать программный многодорожечный секвенсор, например, попытаться выполнить многодорожечное секвенсирование на клавиатуре, такой как Yamaha PSR-E463. Вы не получите много глубокого редактирования, в отличие от более продвинутых рабочих станций высокого класса. >> Проверить лучшую цену на Amazon << Полифония и динамикиЕще одним ограничением для этой клавиатуры является 48-нотная полифония. А если вы пытаетесь создать сочные аранжировки на клавиатуре, вы обнаружите, что у вас очень быстро закончатся ноты. Для действительно небольших интимных концертов, таких как небольшой день рождения, который вы устраиваете дома, или у вас есть друзья, и вы собираетесь играть для них, тогда подойдет Yamaha PSR-E463. Но если вы пытаетесь использовать эту клавиатуру для большей производительности, вам нужно будет подключить микрофон и применить эффекты к микрофону, тогда эта клавиатура может не для вас. Хотя на этой клавиатуре есть дополнительный вход, он не подходит для подключения микрофона, кроме того, вы не можете применить эффекты к дополнительному входу. Колонки на этой клавиатуре хороши для маленькой комнаты, но в большом пространстве их будет недостаточно. Если вы собираетесь серьезно выступать, вы хотите получить клавиатуру с выделенными выходами слева и справа, чтобы вы могли отправлять их в систему громкоговорителя или на внешние динамики монитора клавиатуры или внешние динамики клавиатуры, которые имеют соответствующий размер. для того места, где вы будете выступать. Эта статья была бы неполной, если бы я писал только о том, для чего эта клавиатура не подходит. Каковы преимущества PSR E463?Давайте поговорим о том, для чего эта клавиатура отлично подходит, и каким музыкантом вы бы хотели стать, чтобы получить эту клавиатуру Yamaha PSR-E463. Если вы тот, кто любит поиграть с большим количеством звуков, акустических инструментов, множеством стилей и подыгрывать этому стилю, и вам не нужно вмешиваться в технические аспекты жизни в цифровом мире программного обеспечения, вы просто хотите включить клавиатуру и приступить к работе. Yamaha PSR-E463 отлично подходит для вас. Если вы композитор, который хочет очень быстро набросать что-то, что у вас в голове, у вас есть парочка агрессии пробки, тогда вы просто хотите разыграть. Эта клавиатура действительно хороша для очень быстрого воплощения ваших идей и их записи на флэш-накопитель, и вы можете развивать их дальше, будь то на цифровой платформе или с полноформатным оркестром. И для тех, кто сдает экзамен Trinity UK, программа обучения электронной клавиатуре, эта клавиатура подходит для использования до 4 класса. Эта клавиатура легкая, простая в установке, вы можете просто взять ее и сунуть под мышку, принести в экзаменационный зал и установить менее чем за 5 минут, и вы готовы выступить перед экзаменатором. Эта клавиатура отлично подходит для вас, однако я не могу рекомендовать эту клавиатуру для экзаменов с оценкой выше 5 класса просто потому, что она не позволяет вам использовать басовые инверсии для вашей минусовки. Клавиатура имеет несколько действительно отличных звуков вращающегося органа, звуков электрического пианино, звуков струн, звуков акустического фортепиано, которые вам потребуются, так что этого достаточно до 8-го класса для тех, кто изучает поп- и рок-программу. Преимущество наличия такой клавиатуры в том, что, например, если барабанщик вашей группы отсутствует, вам не о чем беспокоиться, потому что вы можете просто включить стойло и по-прежнему играть ритм, и если вашего гитариста нет рядом , вы просто включаете арпеджиатор на гитару, и все готово. Следовательно, эта клавиатура идеально подходит для вас, если вы только начали исследовать мир MIDI и музыки, и подойдет до тех пор, пока вам не понадобится делать сложные многодорожечные записи и приобретать что-то более продвинутое в будущем.
. |


50
Afx
5
05
02
4M
11
3